品管圈在降低电子体温单书写缺陷中的应用

目的探讨品管圈在降低运行电子体温单书写缺陷中的应用效果。方法根据品管圈活动步骤,运用管理工具对运行电子体温单书写中存在的缺陷进行分析、整改,将改善前后数据进行比较。结果运行电子体温单书写总缺陷次数由改善前36次/周降至改善后15.75次/周,目标达标率105.5%,进步率为56.25%,改善效果显著;此外,圈员在解决问题能力、沟通协调能力、责任心与荣誉感、QCC手法的运用及团队精神等方面较活动前有显著提高。结论运用品管圈可以提高电子护理病历书写质量的环节控制;有效降低运行电子体温单书写缺陷;提升护士工作效率和品质;提高圈员解决问题的能力和学习积极性。

膜片钳技术在生物医学研究中的联合应用及其发展趋势

膜片钳技术是研究离子通道电活动的“金标准”,不仅用于研究生理和病理条件下细胞膜离子通道电生理特性和膜电位的变化,还广泛应用于分析药物作用离子通道机制、优化化合物结构以及评价药物毒性等方面。目前,膜片钳技术已成为现代细胞电生理学研究的常规方法,广泛应用于神经科学、心血管科学、药理学、细胞生物学等领域并取得了丰硕的研究成果。近年来,随着基因组学、光遗传学、质谱技术和芯片技术等的不断涌现和日益完善,这些新技术与膜片钳技术的联合应用极大促进了以离子通道为靶点的药物研发和对疾病发病机制的深入理解,进一步拓宽了生命现象的研究维度,促进了生命科学研究的发展。

小鼠血管壁CD34^(+)干细胞的分离、培养及鉴定

血管壁干细胞(vascular wall-resident stem cells,VW-SCs)在维持血管正常功能以及损伤血管的修复过程中发挥着关键性的作用,对其功能特性的研究将有助于干细胞的调控及应用。本文旨在建立稳定的VW-SCs分离、培养及分选鉴定技术,为进一步深入研究VW-SCs在生理和疾病状态下的增殖、迁移和分化等机制提供丰富、可靠的细胞来源。首先利用组织块贴壁法获取小鼠主动脉外膜以及肠系膜动脉血管壁细胞,传代培养到细胞数量至少达到1×10^(7)后经磁珠分选和流式细胞术鉴定CD34^(+)的VW-SCs;其次采用细胞免疫荧光染色检测干细胞标志物(CD34、Flk-1、c-kit、Sca-1)以及平滑肌标志物(SM22、SM MHC)、内皮标志物(CD31)和细胞核内分裂增殖相关蛋白(Ki-67);血管壁CD34^(+)干细胞的定向分化采用EBM-2内皮分化诱导培养基和FM-2成纤维细胞培养基分别培养7天和3天;利用细胞免疫荧光染色和q-PCR检测内皮细胞标志物(CD31,VWF)和成纤维细胞标志物(Vimentin,PDGFRα)的表达。此外,采用TILLvisION胞内钙信号检测系统结合Ca^(2+)荧光探针Fura-2/AM观察CD34^(+)干细胞胞内钙库Ca^(2+)释放和胞外Ca^(2+)内流特性。结果显示,血管组织块贴壁法和磁珠分选可获取较高纯度(>90%)的小鼠主动脉外膜以及肠系膜动脉血管壁CD34^(+)干细胞。体外培养的血管壁CD34^(+)干细胞可诱导分化为内皮细胞和成纤维细胞。咖啡因和ATP可显著激活CD34^(+)干细胞胞内钙库Ca^(2+)释放,毒胡萝卜素(thapsigargin,TG)耗竭内质网钙库Ca^(2+)后触发钙库操纵的外钙内流(store-operated Ca^(2+)entry,SOCE)。该方法建立了稳定、高效的血管壁CD34^(+)干细胞分离、培养和鉴定技术,为体外深入研究VW-SCs的调控机制以及靶向药物的筛选提供了保障。