为探究鸭疫里默氏杆菌(RA)IX型分泌系统(T9SS)分泌的假定蛋白AS87_05150的功能,本研究采用自杀质粒同源重组的方法构建RA Yb2株AS87_05150基因缺失株Yb2Δ5150及其回补株cYb2Δ5150,经PCR及测序鉴定,结果显示AS87_05150基因缺失株Yb2Δ5...为探究鸭疫里默氏杆菌(RA)IX型分泌系统(T9SS)分泌的假定蛋白AS87_05150的功能,本研究采用自杀质粒同源重组的方法构建RA Yb2株AS87_05150基因缺失株Yb2Δ5150及其回补株cYb2Δ5150,经PCR及测序鉴定,结果显示AS87_05150基因缺失株Yb2Δ5150和回补株cYb2Δ5150均正确构建,缺失株的表型为16S r RNA^(+)AS87_05150 ORF^(-),回补株的表型为16S r RNA^(+)AS87_05150 ORF^(+)。采用荧光定量PCR(qPCR)检测Yb2、Yb2Δ5150和cYb2Δ5150株AS87_05150基因的转录水平;根据上述3株菌不同时间的OD_(600nm)值绘制各菌株的生长曲线;采用微量结晶紫法检测各菌株生物被膜(BF)的形成能力;将10^(7)cfu/孔的Yb2、Yb2Δ5150和cYb2Δ5150株分别感染Vero细胞,检测各菌株对Vero细胞的黏附和侵袭力。q PCR检测结果显示,cYb2Δ5150株中AS87_05150 m RNA相对转录水平比Yb2株高约19倍(P<0.0001),Yb2Δ5150株未扩增到AS87_05150基因;生长曲线结果显示,Yb2Δ5150与Yb2株的生长曲线基本一致,但cYb2Δ5150生长速度与Yb2Δ5150株相比极显著下降(P<0.01);BF测定结果显示,Yb2Δ5150和cYb2Δ5150株BF的形成能力与Yb2株相比均极显著降低(P<0.0001);黏附和侵袭力结果显示,这3株菌对Vero细胞的黏附和侵袭力均无显著差异。将3株菌分别以10^(8)cfu/只~10^(4)cfu/只、10^(10)cfu/只~10^(6)cfu/只和10^(9)cfu/只~10^(5)cfu/只的剂量经肌肉注射接种雏鸭,感染后观察雏鸭的发病情况,并采用Reed-Muench法计算3株菌对雏鸭的半数致死量(LD_(50));将3株菌均以10^(7)cfu/只经肌肉注射感染雏鸭,24 h后剖杀,无菌采集各组鸭血液、肝脏和脑组织,作相应处理后涂板采用平板计数法测定载菌量。根据各组鸭的死亡情况,计算Yb2、Yb2Δ5150和cYb2Δ5150株的LD_(50)分别为6.85×10^(5)cfu、8.75×10^(7)cfu和4.681×10^(8)cfu,即缺失株LD_(50)比野生株高约127倍,但回补株的LD_(50)比缺失株高约5倍。载菌量测定结果显示,Yb2Δ5150株和cYb2Δ5150株感染鸭血液、肝脏、脑组织中的细菌载量比Yb2株感染鸭的载菌量均极显著降低(P<0.001),但前两者之间上述指标均无显著差异。本实验结果表明AS87_05150与RA Yb2株的BF形成和致病性相关,但回补株对雏鸭的毒力和致病性均未回复到野生株的水平。本研究为进一步解析RA AS87_05150的功能及分子致病机制等奠定了基础。展开更多
本试验旨在探讨黄芪多糖(APS)对地塞米松(DEX)诱导的猪小肠上皮细胞(IPEC-J2)凋亡的保护作用。采用不同浓度的APS(0~0.8 mg/m L)或DEX(0~0.7 mg/m L)处理IPEC-J2细胞24 h,利用细胞计数试剂(CCK-8)检测细胞活性,确定药物作用浓度。对照...本试验旨在探讨黄芪多糖(APS)对地塞米松(DEX)诱导的猪小肠上皮细胞(IPEC-J2)凋亡的保护作用。采用不同浓度的APS(0~0.8 mg/m L)或DEX(0~0.7 mg/m L)处理IPEC-J2细胞24 h,利用细胞计数试剂(CCK-8)检测细胞活性,确定药物作用浓度。对照组无添加,A组添加0.4 mg/m L APS培养,D组添加0.4 mg/m L DEX培养,A+D组添加0.4 mg/m L APS+0.4 mg/m L DEX共培养。采用Calcein/PI细胞活性与细胞毒性检测试剂盒检测细胞的存活情况,流式细胞仪检测IPEC-J2细胞的凋亡情况,透射电子显微镜观察细胞的形态,实时荧光定量PCR检测凋亡基因Caspase3、Caspase9、Bid、Bcl-2 m RNA的相对表达量,Western-blotting检测Caspase3、Caspase9、Bid、Bcl-2蛋白的表达水平。结果表明,APS可以通过调控凋亡蛋白和基因的表达来抑制DEX诱导的IPEC-J2细胞的凋亡,恢复IPEC-J2细胞的活性,起到保护猪小肠上皮细胞作用。展开更多
文摘为探究鸭疫里默氏杆菌(RA)IX型分泌系统(T9SS)分泌的假定蛋白AS87_05150的功能,本研究采用自杀质粒同源重组的方法构建RA Yb2株AS87_05150基因缺失株Yb2Δ5150及其回补株cYb2Δ5150,经PCR及测序鉴定,结果显示AS87_05150基因缺失株Yb2Δ5150和回补株cYb2Δ5150均正确构建,缺失株的表型为16S r RNA^(+)AS87_05150 ORF^(-),回补株的表型为16S r RNA^(+)AS87_05150 ORF^(+)。采用荧光定量PCR(qPCR)检测Yb2、Yb2Δ5150和cYb2Δ5150株AS87_05150基因的转录水平;根据上述3株菌不同时间的OD_(600nm)值绘制各菌株的生长曲线;采用微量结晶紫法检测各菌株生物被膜(BF)的形成能力;将10^(7)cfu/孔的Yb2、Yb2Δ5150和cYb2Δ5150株分别感染Vero细胞,检测各菌株对Vero细胞的黏附和侵袭力。q PCR检测结果显示,cYb2Δ5150株中AS87_05150 m RNA相对转录水平比Yb2株高约19倍(P<0.0001),Yb2Δ5150株未扩增到AS87_05150基因;生长曲线结果显示,Yb2Δ5150与Yb2株的生长曲线基本一致,但cYb2Δ5150生长速度与Yb2Δ5150株相比极显著下降(P<0.01);BF测定结果显示,Yb2Δ5150和cYb2Δ5150株BF的形成能力与Yb2株相比均极显著降低(P<0.0001);黏附和侵袭力结果显示,这3株菌对Vero细胞的黏附和侵袭力均无显著差异。将3株菌分别以10^(8)cfu/只~10^(4)cfu/只、10^(10)cfu/只~10^(6)cfu/只和10^(9)cfu/只~10^(5)cfu/只的剂量经肌肉注射接种雏鸭,感染后观察雏鸭的发病情况,并采用Reed-Muench法计算3株菌对雏鸭的半数致死量(LD_(50));将3株菌均以10^(7)cfu/只经肌肉注射感染雏鸭,24 h后剖杀,无菌采集各组鸭血液、肝脏和脑组织,作相应处理后涂板采用平板计数法测定载菌量。根据各组鸭的死亡情况,计算Yb2、Yb2Δ5150和cYb2Δ5150株的LD_(50)分别为6.85×10^(5)cfu、8.75×10^(7)cfu和4.681×10^(8)cfu,即缺失株LD_(50)比野生株高约127倍,但回补株的LD_(50)比缺失株高约5倍。载菌量测定结果显示,Yb2Δ5150株和cYb2Δ5150株感染鸭血液、肝脏、脑组织中的细菌载量比Yb2株感染鸭的载菌量均极显著降低(P<0.001),但前两者之间上述指标均无显著差异。本实验结果表明AS87_05150与RA Yb2株的BF形成和致病性相关,但回补株对雏鸭的毒力和致病性均未回复到野生株的水平。本研究为进一步解析RA AS87_05150的功能及分子致病机制等奠定了基础。
文摘本试验旨在探讨黄芪多糖(APS)对地塞米松(DEX)诱导的猪小肠上皮细胞(IPEC-J2)凋亡的保护作用。采用不同浓度的APS(0~0.8 mg/m L)或DEX(0~0.7 mg/m L)处理IPEC-J2细胞24 h,利用细胞计数试剂(CCK-8)检测细胞活性,确定药物作用浓度。对照组无添加,A组添加0.4 mg/m L APS培养,D组添加0.4 mg/m L DEX培养,A+D组添加0.4 mg/m L APS+0.4 mg/m L DEX共培养。采用Calcein/PI细胞活性与细胞毒性检测试剂盒检测细胞的存活情况,流式细胞仪检测IPEC-J2细胞的凋亡情况,透射电子显微镜观察细胞的形态,实时荧光定量PCR检测凋亡基因Caspase3、Caspase9、Bid、Bcl-2 m RNA的相对表达量,Western-blotting检测Caspase3、Caspase9、Bid、Bcl-2蛋白的表达水平。结果表明,APS可以通过调控凋亡蛋白和基因的表达来抑制DEX诱导的IPEC-J2细胞的凋亡,恢复IPEC-J2细胞的活性,起到保护猪小肠上皮细胞作用。
