基于Arduino的物联网智能花盆设计

物联网智能花盆通过手机App端与植物建立沟通渠道,采用温湿度、光照、PH值等功能传感器监测植物的生长状况,对采集到的数据经Arduino单片机搭建的智能平台融合处理后由Wi-Fi无线传输至用户手机端,使用户能及时了解植物的生长情况并适时采取养护措施。

原发性干燥综合征患者肠道菌群特征分析

目的通过比较原发性干燥综合征(pSS)患者和健康人群肠道菌群的差异,深入探讨pSS患者肠道菌群与pSS发生发展的关系。方法招募2019年1月至2021年2月于大连市中心医院风湿免疫科住院的pSS患者60名,作为本研究的pSS组,同时招募大连市中心医院体检中心的健康志愿者50名作为本研究的对照组(Control组)。收集两组粪便标本,各50例,提取细菌DNA进行16S rDNA高通量测序后进行菌群多样性和LEfSe分析。结果pSS组肠道菌群α-多样性较Control组显著降低(P<0.05)。与Control组相比,pSS组厚壁菌门/拟杆菌门比值降低,普雷沃菌科、红蝽菌科、消化链球菌科、Eggerthellaceae,unidentified_Clostridiales丰度降低,而拟杆菌科升高,罗姆布茨菌属和Dorea等丰度降低,拟杆菌属、韦荣球菌属等丰度升高。并且在pSS组肠道菌群中发现大肠埃希菌丰度明显升高。结论pSS患者存在肠道菌群失调,提示菌群失调可能与pSS的发生发展有关。

原发性与继发性干燥综合征患者的肠道菌群差异

目的探究原发性干燥综合征(primary Sjgren′s syndrome, pSS)患者与继发性干燥综合征(secondary Sjgren′s syndrome, sSS)患者的肠道菌群差异及其与临床免疫指标之间的相关性。方法对15例pSS患者和10例sSS患者进行临床数据统计、血清标本和粪便标本采集。将采集到的粪便标本进行DNA提取和筛选,再经16S rDNA高通量测序后进行OTU分析,Alpha、Beta多样性以及样品组间显著性差异分析。同时使用免疫荧光法检测自身抗体ANA,免疫印迹法检测抗核抗体谱(SSA、SSB、Ro52),散射比浊法检测风湿系列(RF、CRP)、免疫球蛋白(IgG等)和补体(C3、C4)等12种免疫学指标,并分析肠道菌群丰度与免疫指标浓度的相关性。结果 pSS患者与sSS患者肠道菌群存在差异,pSS患者的肠道菌群多样性大于sSS患者。在门水平上,sSS患者较pSS患者厚壁菌门丰度降低、变形菌门丰度升高。经t-test检验,在科水平,链球菌科为2组差异最为显著的菌科(t=0.029,P<0.01),同时在属水平,链球菌属也是差异最大的菌属(t=0.029,P<0.01),CRP与Parabacteroides等多个菌属有显著的相关性。结论 pSS患者与sSS患者肠道菌群存在明显差异,这些差异可能与SSA、SSB和CRP具有相关性。

类风湿性关节炎患者肠道真菌菌群特征

目的 分析类风湿性关节炎(RA)患者肠道真菌菌群多样性变化。方法 纳入RA患者30例,健康体检者31例。采用ITS2高通量测序法测定RA患者与健康体检者共61例粪便样本的真菌构成。通过Alpha与Beta多样性、t检验及LEfSe分析比较2组间的真菌物种组成及差异。结果 RA患者肠道中假丝酵母菌属(Candida)的丰度有所上升,并富集节担菌属(Wallemia)、黄孢原毛平革菌属(Phanerochaete)、Suhomyces、弯颈霉属(Tolypocladium)、共球藻属(Trebouxia)、银耳属(Tremella)、Scolecostigmina属及帚枝霉属(Sarocladium)。结论 RA患者的肠道真菌菌群多样性没有发生显著改变,但其菌群结构发生改变,这些改变可能与RA的发生相关。

α-1,6葡聚糖与低聚异麦芽糖对益生菌和人体肠道菌群的影响比较研究

目的比较α-1,6葡聚糖和低聚异麦芽糖对益生菌的体外增殖作用,评价2种低聚糖对人体肠道菌群的影响。方法脆弱拟杆菌在分别含有2种低聚糖的不同培养基中发酵,活菌计数绘制生长曲线;采集12位健康志愿者的新鲜粪便,将肠道菌群悬液按10%的接种量分别接种于Control组(含氮基础培养基)、α-1,6葡聚糖组(含氮基础培养基加1%α-1,6葡聚糖)及低聚异麦芽糖组(含氮基础培养基加1%低聚异麦芽糖),37℃恒温静态厌氧发酵24 h。采用高通量测序技术分析粪便发酵液菌群结构;应用高效液相色谱法检测粪便发酵液中短链脂肪酸(SCFAs)水平。结果α-1,6葡聚糖促进脆弱拟杆菌增殖的能力较低聚异麦芽糖强[(5.27±0.33)vs(4.80±0.66),×10^(8)CFU/mL];粪便发酵实验显示α-1,6葡聚糖可降低粪便中厚壁菌门/拟杆菌门比值(t=2.821,P=0.0478),显著提升SCFAs水平(丙酸:t=3.750,P=0.0092;丁酸:t=5.747,P=0.0018)。结论α-1,6葡聚糖可以改善肠道菌群结构并促进SCFAs产生。