山羊慢性酒糟中毒血液代谢物分析及乙醇中毒通路关键基因mRNA转录水平变化

本试验旨在揭示慢性酒糟中毒对山羊血液代谢物及其显著性代谢通路——乙醇中毒代谢通路的影响,筛选潜在性诊断生物标志物,为该病神经系统紊乱发生机制及早期诊断提供参考资料。试验选取4月龄健康大足黑山羊与波尔山羊的杂交后代15只,随机分为3组,65%白酒糟组、75%白酒糟组、基础日粮对照组。每隔15 d,进行肝肾、钙磷及蛋白质代谢指标检测,结合临床症状判断山羊慢性酒糟中毒建模成功。采集血样,利用超高效液相色谱—四极杆飞行时间质谱联用技术进行差异代谢物分析并筛选差异代谢物代谢富集通路,研究差异代谢通路中关键基因的表达变化。代谢组学结果表明,慢性酒糟中毒引起山羊体内多巴胺(DA)和2-呋喃酰甘氨酸(2-FG)上调,前列腺素I 2(PGI_(2))下调;突触小泡周期、多巴胺能突触、乙醇中毒、牛磺酸和亚牛磺酸代谢、组氨酸代谢、苯丙氨酸、酪氨酸和色氨酸生物合成、三羧酸循环、鞘脂信号通路、cAMP信号通路等代谢通路均差异显著(P<0.05)。其中,乙醇中毒代谢途径变化显著,且影响因子>0.2;乙醇中毒代谢通路中,75%白酒糟组TH、DAT表达量显著降低(P<0.05),DDC、MAOA表达量呈降低趋势(P>0.05)。综上所述,慢性酒糟中毒可引起山羊血液中有机酸类、氨基酸类、脂质与类脂分子类、胺类、醇类、脂肪酸类及类固醇类代谢物的显著性改变,DA、2-FG、PGI_(2)可作为慢性酒糟中毒病的潜在性诊断生物标志物。差异代谢物富集的共同通路为乙醇中毒代谢途径,途径中DAT、TH mRNA表达下降,使机体DA浓度升高,进而引起中毒山羊的神经功能紊乱。

重庆肉牛生产中鲜酒糟使用现状及其副效应的调查研究

本研究对重庆市肉牛生产中鲜酒糟的使用现状及其产生的副效应情况进行了调查,结果得出:所调查肉牛中,饲喂酒糟的肉牛比例达94.91%,其中育肥架子牛使用酒糟的比例达95.6%,繁殖母牛使用酒糟的比例为81.25%,且白酒糟使用最普遍,单独使用白酒糟的牛场占比60.81%;对酒糟饲喂剂量的调查中,三段式育肥法以中剂量饲喂的肉牛比例最高,二段式育肥法和持续式育肥法以高剂量饲喂的肉牛比例最高,繁殖母牛均以中剂量饲喂的比例最高;用酒糟饲喂肉牛后,架子牛发生慢性酒糟中毒的比例为19.55%,母牛为25.48%;用超高剂量、高剂量酒糟饲喂肉牛后,慢性中毒的发病比例较高,生产中建议以中剂量酒糟饲喂肉牛较好。

湿酒糟中乙醇等九种成分分析及其体外拮抗物质的筛选

为弄清湿酒糟中乙醇、甲醛等9种成分的含量及其储存过程中的变动规律,筛选酒糟中主要毒性成分的有效拮抗物质,本试验选择川渝地区大酒厂、小酒厂的高粱型鲜白酒糟和啤酒厂的新鲜啤酒糟,随机抽样成鲜糟组、储存7 d组、储存15 d组、存储30 d组(每个储存组5个重复),在相应时间点采集酒糟试样10份(150 g/份),采用气相色谱法测定酒糟试样中甲醇、乙醇、戊醇、正丙醇、异戊醇、异丁醇及甲醛的含量,采用高效液相色谱法测定试样中乙酸、乳酸的含量。将存储7 d的小酒厂高粱型白酒糟随机分为18组(第1~17组为试验组,第18组为对照组),1~17组分别在酒糟中加入1.5%碳酸氢钠、3%膨润土,0.5%、1%、1.5%氧化镁,1%、3%、5%腐植酸钠,1%、3%、5%氧化钙,1%、3%、5%蒙脱石,1%、3%、5%分子筛,混匀后室温作用2 h,再采集各组酒糟试样(30 g/份),用气相色谱法测定其中的甲醛、乙醇含量,用高效液相色谱法测定其中的乙酸、乳酸含量。结果显示:鲜啤酒糟及大厂、小厂鲜白酒糟中的乙醇、乙酸、乳酸、甲醛含量较高;储存7、15、30 d后啤酒糟和大厂白酒糟中的乙醇、乙酸含量随储存时间增加而显著上升(P<0.01),小厂白酒糟则呈现显著下降(P<0.01);三种酒糟中的乳酸含量均随储存时间增加而显著下降(P<0.05);啤酒糟和小厂白酒糟中的甲醛含量随储存时间增加而升高(P<0.01);1%氧化镁对酒糟中的乳酸、乙酸、乙醇、甲醛四种主要毒性成分的体外拮抗作用最好。

湿酒糟中乙醇等9种成分分析及拮抗物质的体外筛选

试验旨在研究湿酒糟中乙醇、甲醛等9种成分的含量及储存过程中变动规律,筛选对酒糟中主要毒性成分的有效拮抗物质。将产自川渝地区大酒厂、小酒厂的高粱型鲜白酒糟和啤酒厂的新鲜啤酒糟,均随机抽样成鲜糟组、储存7 d组、储存15 d组、存储30 d组,每个储存组5个重复,在相应时间点再采集酒糟试样,用气相色谱法测定酒糟试样中甲醇、乙醇、戊醇、正丙醇、异戊醇、异丁醇及甲醛的含量,高效液相色谱法测定试样中乙酸、乳酸的含量。存储7 d的白酒糟随机分为18组,1~17组为试验组,第18组为对照,500 g/组,1~17组按组次序号以质量百分比在酒糟中依次加入碳酸氢钠1.5%、膨润土3%,氧化镁0.5%、1%、1.5%,腐植酸钠、氧化钙、蒙脱石、分子筛均为1%、3%、5%,混匀后室温作用2 h,再采集各组酒糟试样测定其中甲醛、乙醇、乙酸、乳酸的含量。结果表明,鲜啤酒糟及大厂、小厂鲜白酒糟中乙醇、乙酸、乳酸、甲醛的检出数量较高,依次为乙醇299.64±8.48 mg/kg.DM、486.06±25.69 mg/kg.DM、11667.45±107.45 mg/kg.DM;乙酸1.80±0.35 g/kg.DM、7.11±0.29 g/kg.DM、5.14±0.63 g/kg.DM;乳酸27.93±2.69 g/kg.DM、92.90±2.56 g/kg.DM、25.41±0.71 g/kg.DM;甲醛9.64±2.49 mg/kg.DM,15.31±2.31 mg/kg.DM,18.79±2.87 mg/kg.DM。储存7、15、30 d,啤酒糟、大厂白酒糟中乙醇、乙酸含量随储存时间增加而显著上升(P<0.01),小厂白酒糟则呈现显著下降(P<0.01);3种酒糟中乳酸含量均随储存时间的增加而出现显著下降(P<0.05);啤酒糟和小厂白酒糟中甲醛含量随储存时间增加而升高(P<0.01)。1%的氧化镁对酒糟中上述4种物质的体外拮抗作用最好。

肥胖犬猫麻醉的研究进展

随着社会的不断进步和人们生活条件的不断提升,犬猫在家庭中所占的比重越来越大。宠物犬猫的不科学饲养、缺乏运动、绝育以及患有肾上腺皮质机能亢进、甲状腺机能减退等疾病因素,常会导致其肥胖症的发生。肥胖不仅会影响犬猫心脏、肝脏、膀胱、骨骼等多个器官和系统的功能,还会在犬猫麻醉时对麻醉剂的作用效果产生不良影响。本文主要综述了肥胖与麻醉剂之间的相互作用,并对肥胖犬猫的麻醉提出了相关建议。

高剂量白酒糟对山羊瘤胃发酵、菌群结构及炎性基因的影响

旨在研究饲喂高剂量(65%,75%)白酒糟对3月龄山羊瘤胃发酵、菌群结构及炎性基因的影响,试验选择15只日龄、体质量相近的健康本地山羊,随机分为对照组、65%白酒糟组和75%白酒糟组,5只/组。对照组饲喂基础饲粮,试验组分别饲喂添加65%,75%的白酒糟日粮,正试期90d。采用气质联用法、ELISA法依次检测参试山羊瘤胃液VFA、组胺和LPS浓度,用Illumina Miseq PE300高通量测序平台进行瘤胃液16SrDNA测序,qRT-PCR法测定瘤胃组织中p65、COX2、VCAM1的表达量。结果表明:1)65%和75%白酒糟组山羊瘤胃液pH和总VFA显著低于对照组(P<0.05),75%白酒糟组山羊瘤胃液乙酸、丁酸及乙酸/丙酸比值显著低于对照组(P<0.05),75%白酒糟组山羊瘤胃液组胺和LPS浓度显著上升(P<0.01)。2)65%和75%白酒糟组山羊瘤胃微生物中的优势菌门为厚壁菌门(Firmicutes)和拟杆菌门(Bacteroidota),且占总门类的90%以上,丰度最高的科、属为普雷沃菌,且普雷沃菌丰度会随着白酒糟饲喂量的增多呈上升趋势。3)65%和75%白酒糟组山羊瘤胃组织炎性基因p65、COX2、VCAM1mRNA相对表达量极显著升高(P<0.01)。饲喂65%和75%白酒糟会降低山羊瘤胃的发酵功能,一定程度上使瘤胃菌群的多样性和丰度降低;瘤胃液LPS和组胺浓度升高,可通过NF-κB信号通路中的p65、COX22个途径引起瘤胃上皮的炎症。

当归内酯对鸡新城疫疫苗免疫效价、免疫细胞及相关因子的影响

第1批240只7日龄青脚麻鸡随机分为6组,Ⅰ组为空白对照,Ⅱ组为疫苗对照,Ⅱ、Ⅵ组在14,28日龄接种新城疫弱毒疫苗,Ⅲ~Ⅵ组于每次免疫前连续皮下注射当归内酯3d,剂量分别为10,20,40,80mg/kg,Ⅰ、Ⅱ组注射等量生理盐水。各组分别于免疫前和免疫后7,14,21,28,35d采集心血,检测血清新城疫抗体效价,并测定免疫器官指数。第2批120只7日龄青脚麻鸡随机分为4组,Ⅶ组为空白对照,Ⅷ组为疫苗对照,Ⅷ~Ⅹ组于14,28日龄接种新城疫弱毒疫苗,Ⅸ组在免疫前连续3d皮下注射当归内酯20mg/kg,Ⅹ组在免疫前连续5d注射当归内酯20mg/kg,Ⅶ、Ⅷ组注射等量生理盐水。各组于免疫前和免疫后7,14,21,28,35d采集心血,测定血液中T淋巴细胞亚群数量,并进行脾脏淋巴细胞增殖试验及细胞因子测定。结果显示,疫苗免疫后7,21d,Ⅳ组新城疫抗体效价显著高于Ⅱ组(P<0.05),免疫后7d法氏囊指数Ⅳ组显著高于Ⅱ组(P<0.05);注射20mg/kg当归内酯可提高鸡新城疫免疫抗体效价和法氏囊指数。Ⅹ组T、B淋巴细胞增殖显著高于Ⅶ、Ⅷ组(P<0.05),Ⅸ、Ⅹ组CD4^(+)及CD4^(+)/CD8^(+)比值显著高于Ⅶ~Ⅷ组(P<0.05),且Ⅹ组显著高于Ⅸ组(P<0.05);免疫后21,28d,Ⅸ组IL-2mRNA表达量显著高于Ⅷ~Ⅹ组(P<0.01);结果表明,20mg/kg当归内酯连续注射5d,可促进鸡T、B淋巴细胞增殖,提高CD4^(+)及CD4^(+)/CD8^(+)的比值,上调IL-2mRNA表达量。