pH值与聚乙二醇对芸苔属花粉人工萌发的影响

紫菜苔（Ｂｒａｓｉｃａｃａｍｐｅｓｔｒｉｓｖａｒ．ｐｕｒｐｕｒｅａ）花粉在ｐＨ８．５，并以２０％ＰＥＧ取代蔗糖的Ｒ培养基中显著提高了萌发率和改善了花粉管的生长．该改良Ｒ培养基亦适用于白菜型油菜（Ｂ．ｃａｍｐｅｓｔｒｉｓ）与青菜（Ｂ．ｃｈｉｎｅｎｓｉｓ）花粉的人工萌发．将改良Ｒ培养基水合或萌发的花粉授于花柱切面上，花粉管可在花柱中顺利生长．为了比较花粉离体与活体萌发的ｐＨ条件，应用微电极测定了紫菜苔花粉与柱头表面微环境的ｐＨ值，二者均呈弱酸性，表明花粉在碱性条件下的人工萌发并非对自然萌发时ｐＨ条件的简单模拟．

水稻乙醛脱氢酶基因的克隆及其在不育系中的表达

从水稻中分离了乙醛脱氢酶基因 (Osaldh)的全长cDNA ,序列分析显示OsaldhcDNA含有一个完整的编码 5 49个氨基酸的开放阅读框 ,其编码蛋白OSALDH的N端为预期的线粒体前导肽 ,中部具有醛类脱氢酶基因家族的酶催化活性中心 ,OSALDH与玉米、烟草、人类的线粒体乙醛脱氢酶同源性分别高达 87%、77%、5 9%。Northern分析显示 ,幼根中Osaldh的表达水平高于幼苗、幼穗 ,不育品种幼穗中Osaldh的转录水平普遍高于对应的可育恢复系。

芸苔属脱外壁花粉作为研究花粉萌发的新实验系统(英文)

脱外壁花粉的分离与人工萌发已在芸苔属(Brassica L.)中取得成功。由于其缺乏外壁与萌发沟这一特点,脱外壁花粉是研究花粉萌发的有用的实验系统。作者重点研究了脱外壁花粉分离与萌发过程中有关极性形成、萌发位点预定及新壁的合成等问题。结果表明在外壁脱离之前花粉已经活化并预先建立了极性;脱外壁后的萌发位点仍位于原萌发沟处;在萌发位点处合成的新壁可能起限定花粉管直径的作用。由此推论,脱外壁花粉可在花粉生物学研究中广泛加以应用。

芸苔属脱外壁花粉的分离与人工萌发

芸苔属青菜（Ｂｒａｓｓｉｃａ ｃｈｉｎｅｎｓｉｓ）与紫菜苔（Ｂ． ｃａｍ ｐｅｓｔｒｉｓｖａｒ． ｐｕｒｐｕｒｅａ）的花粉经低温水合、热激、渗激三步程序，分离出大量具萌发能力的脱外壁花粉，脱外壁率可高达６０％ 以上。在含有碳源与氮源及Ｒｏｂｅｒｔｓ培养基盐成分的碱性ＰＥＧ 培养基中，首次使芸苔属脱外壁花粉萌发，萌发率可达３３％ ～４１％ 。在扫描电镜下观察了花粉脱外壁与萌发的过程。讨论了不同植物花粉脱外壁的方法与花粉壁生物学特点的对应关系。

核编码的育性恢复基因

细胞质雄性不育现象涉及线粒体基因组中的不育基因与核编码的育性恢复基因的相互作用。文章介绍了有关恢复基因对线粒体CMS基因表达的影响方式。

紫菜苔花粉超低温保存及其原生质体分离

研究了紫菜苔花粉超低温保存的影响因素：花粉发育时期，冰冻保护剂与隆温程序。建立了较适宜的保存流程。保存６０、９０天期间，成熟花粉与近成熟花粉生活力保持不变，幼嫩花粉生活力稍有下降。前二者与后者相对存活率分别达９１％与８４％左右。保存的和新鲜的幼嫩花粉经培养均能诱导脱分化，发生细胞分裂。改进和简化了紫菜苔成熟花粉原生质体分离技术，并在其幼嫩花粉原生质体分离上取得成功。保存的成熟花粉化冻后直接酶解。

油菜花粉超低温保存及花粉原生质体分离

花粉超低温保存有多方面的研究与应用价值,并已在多种植物的成熟花粉保存方面取得长足进展.幼嫩花粉保存方面开始有个别报道.近年在花粉原生质体的实验研究中,为了减少对开花季节的依赖。

紫菜苔花粉原生质体的电激转化及Zm13-260-GUS-NOS融合基因的时序表达

利用花粉作为外源基因的媒介进行植物遗传转化是一个活跃的研究方向,而将外源基因导入花粉是这一转化体系的重要环节.但因花粉壁厚,导入外源DNA比较困难,而脱壁后的花粉原生质体则理应相对优越.近年花粉原生质体的分离与培养已取得了一定进展,以花粉原生质体作为转化受体已成为可能.为此,我们以花粉特异启动子Zm13-260控制的GUS基因作为报告基因,用电激法分别转化紫菜苔花粉原生质体和花粉粒,通过瞬间表达检测,比较了二者的转化效果,并探讨了GUS基因在不同发育时期花粉原生质体中的时序表达特性.

Transient transformation of pollen protoplasts via electroporation and temporal expression of Zml3-260-GUS-NOS chimeric gene in Brasska campestris var.purpurea

Using pollen as a vector of foreign genes for plant transformation is an active research area. An important link in this transformation system is the delivery of foreign genes into pollen. However, DNA transfer into pollen is difficult because of the existence of a thick pollen wall, whereas pollen protoplast deprived of pollen wall should be advantageous