目的评价集成式微酸性次氯酸溶液对口腔综合治疗台水路系统(dental unit water lines,DUWLs)的持续消毒效果。方法以储水瓶定期人工配置含氯消毒液消毒DUWLs为对照组,以集成式微酸性次氯酸溶液(非电解,有效氯浓度为10 mg/L)持续消毒DUWL...目的评价集成式微酸性次氯酸溶液对口腔综合治疗台水路系统(dental unit water lines,DUWLs)的持续消毒效果。方法以储水瓶定期人工配置含氯消毒液消毒DUWLs为对照组,以集成式微酸性次氯酸溶液(非电解,有效氯浓度为10 mg/L)持续消毒DUWLs为实验组,采集口腔科4个功能区50台口腔综合治疗台的水源水、管路水(椅位前水)、椅位水(漱口、高速、三用枪)及末端水出水口水样,对比2种消毒方式细菌菌落计数。结果实验组的水路水(椅位前水)、椅位水的细菌微生物计数检测合格率为100.0%,高于对照组的60%,差异有统计学意义(P<0.05);实验组诊疗椅的高速水、三用枪水、漱口水的细菌微生物计数检测合格率(100.0%)高于对照组(43.8%),差异有统计学意义(P<0.05);结论口腔综合治疗台水路中存在微生物污染,使用微酸性次氯酸溶液(非电解,有效氯浓度为10 mg/L)持续消毒的有效性、高效性、稳定性和持续性效果明显,但对致病菌和生物膜的消毒效果还需进行更深入的研究。展开更多
目的研究脂肪干细胞(ASCs)向内皮分化的能力,并与骨髓间充质干细胞(BMSCs)对比。方法从SD大鼠中分离培养ASCs、BMSCs,选择生长良好的一定代数的细胞,流式细胞仪鉴定细胞表面标志物;用CCK-8法绘制细胞生长曲线;进行标准内皮诱导3周,用q ...目的研究脂肪干细胞(ASCs)向内皮分化的能力,并与骨髓间充质干细胞(BMSCs)对比。方法从SD大鼠中分离培养ASCs、BMSCs,选择生长良好的一定代数的细胞,流式细胞仪鉴定细胞表面标志物;用CCK-8法绘制细胞生长曲线;进行标准内皮诱导3周,用q PCR检测内皮细胞特异性标志物CD31、KDR、v WF m RNA的表达;免疫荧光染色观察表面抗原CD31的表达;用Dil标记的乙酰化低密度脂蛋白(Dil-Ac-LDL)检测诱导组细胞的摄取功能;在Matrigel上验证诱导组细胞的成管能力。结果成功分离培养大鼠ASCs和BMSCs,形态上,ASCs与BMSCs类似,均呈长梭形、纺锤状,类成纤维细胞样形态;流式检测结果显示BMSCs与ASCs均高表达间充质干细胞表面标志物CD29(100%与96.9%)、CD90(96.5%与99.2%),低表达造血系细胞表面标志物CD45(3.9%与0.8%),证实所提取的是间充质干细胞;CCK-8增殖实验结果表明,ASCs的增殖速度比BMSCs的增殖速度快(P<0.05)。标准内皮诱导后,q PCR显示诱导组BMSCs和ASCs表达CD31、KDR、v WF m RNA水平均高于未诱导组(P<0.05);免疫荧光染色显示CD31抗原表达在诱导组的细胞膜表面;荧光显微镜下诱导组细胞摄取Dil-Ac-LDL(未诱导组不摄取);诱导组细胞在Matrigel上均具备成管能力,证实诱导后的细胞为内皮细胞。结论表明BMSCs和ASCs均可诱导向内皮细胞分化,ASCs广泛分化为内皮细胞的时间更短且增殖能力更强,提示ASCs比BMSCs更具有应用前景。展开更多
文摘目的评价集成式微酸性次氯酸溶液对口腔综合治疗台水路系统(dental unit water lines,DUWLs)的持续消毒效果。方法以储水瓶定期人工配置含氯消毒液消毒DUWLs为对照组,以集成式微酸性次氯酸溶液(非电解,有效氯浓度为10 mg/L)持续消毒DUWLs为实验组,采集口腔科4个功能区50台口腔综合治疗台的水源水、管路水(椅位前水)、椅位水(漱口、高速、三用枪)及末端水出水口水样,对比2种消毒方式细菌菌落计数。结果实验组的水路水(椅位前水)、椅位水的细菌微生物计数检测合格率为100.0%,高于对照组的60%,差异有统计学意义(P<0.05);实验组诊疗椅的高速水、三用枪水、漱口水的细菌微生物计数检测合格率(100.0%)高于对照组(43.8%),差异有统计学意义(P<0.05);结论口腔综合治疗台水路中存在微生物污染,使用微酸性次氯酸溶液(非电解,有效氯浓度为10 mg/L)持续消毒的有效性、高效性、稳定性和持续性效果明显,但对致病菌和生物膜的消毒效果还需进行更深入的研究。
文摘目的研究脂肪干细胞(ASCs)向内皮分化的能力,并与骨髓间充质干细胞(BMSCs)对比。方法从SD大鼠中分离培养ASCs、BMSCs,选择生长良好的一定代数的细胞,流式细胞仪鉴定细胞表面标志物;用CCK-8法绘制细胞生长曲线;进行标准内皮诱导3周,用q PCR检测内皮细胞特异性标志物CD31、KDR、v WF m RNA的表达;免疫荧光染色观察表面抗原CD31的表达;用Dil标记的乙酰化低密度脂蛋白(Dil-Ac-LDL)检测诱导组细胞的摄取功能;在Matrigel上验证诱导组细胞的成管能力。结果成功分离培养大鼠ASCs和BMSCs,形态上,ASCs与BMSCs类似,均呈长梭形、纺锤状,类成纤维细胞样形态;流式检测结果显示BMSCs与ASCs均高表达间充质干细胞表面标志物CD29(100%与96.9%)、CD90(96.5%与99.2%),低表达造血系细胞表面标志物CD45(3.9%与0.8%),证实所提取的是间充质干细胞;CCK-8增殖实验结果表明,ASCs的增殖速度比BMSCs的增殖速度快(P<0.05)。标准内皮诱导后,q PCR显示诱导组BMSCs和ASCs表达CD31、KDR、v WF m RNA水平均高于未诱导组(P<0.05);免疫荧光染色显示CD31抗原表达在诱导组的细胞膜表面;荧光显微镜下诱导组细胞摄取Dil-Ac-LDL(未诱导组不摄取);诱导组细胞在Matrigel上均具备成管能力,证实诱导后的细胞为内皮细胞。结论表明BMSCs和ASCs均可诱导向内皮细胞分化,ASCs广泛分化为内皮细胞的时间更短且增殖能力更强,提示ASCs比BMSCs更具有应用前景。