水霉(Soprolegnia fer ax)生长菌丝顶端细胞内游离Ca^(2+)和膜结合Ca^(2+)的分布

本文比较和研究了水霉(Saprolegnia ferax)生长菌丝顶端胞内Fluo-3游离Ca^(2+)和CTC膜结合Ca^(2+)的荧光分布影像。激光共焦扫描显微镜下观察可见:Fluo-3荧光有房室化现象,Fluo-3荧光反映的是细胞质游离Ca^(2+)与细胞器游离Ca^(2+)总的分布状况,Fluo-3游离Ca^(2+)的最大荧光强度出现在菌丝顶端2—10μm区域,10μm以后荧光强度逐渐下降,约40μm以后荧光降到很低,值得注意的是菌丝顶端2μm以前存在一个低荧光强度区。CTC膜结合Ca^(2+)的荧光影像显示:pH6.8或8.0的条件下菌丝最顶端2μm以前的区域都不能被染色,但pH8.0条件下的荧光较pH6.8弥散而强烈,代表线粒体的蠕虫状荧光斑点不再能够清晰辨认,说明其它细胞器也被染色,但菌丝顶端仍然不能被着色。结合菌丝顶端DIC和超微结构分析说明,菌丝顶端泡囊不是一个Ca^(2+)库,线粒体和内质网等是菌丝胞内重要的Ca^(2+)库。本文结果还澄清了有关菌丝内细胞质游离Ca^(2+)分布的矛盾报道。

钙离子在水霉(Saprolegnia ferax)菌丝顶端细胞壁中呈极性分布

焦锑酸钾处理的水霉(Saprolegnia ferax)菌丝显示:焦锑酸沉淀颗粒仅存在菌丝细胞壁而不是原生质中,并呈顶端到基部的极性分布,即在菌丝最顶端细胞壁中丰富致密、重叠在一起,在约3—10μm的亚顶端则变得稍为稀薄而可分辨,在约10μm以后的成熟区域进一步显得松散而无规律。焦锑酸沉淀颗粒可经EGTA螫合处理去除,并经X-射线微区分析证明在3.6—3.7keV区域可产生Sb和Ca元素混合峰,说明焦锑酸沉淀反映了Ca^(2+)的分布。对冷冻干燥菌丝细胞壁表面进行扫描电镜X-射线微区分析,同样证明菌丝细胞壁含有大量的Ca,菌丝最顶端Ca信号强度高于10μm以后的成熟区。由于Ca^(2+)和H^+可能为一对拮抗因子维持菌丝顶端细胞壁可塑性和刚性间的平衡以保证菌丝顶端生长,我们检验了菌丝生长过程中培养介质的pH变化,证实培养介质pH随培养时间的延长而逐渐下降。上述结果提示细胞壁Ca^(2+)可能在菌丝顶端生长过程中起作用。

培养介质pH和EGTA对水霉(Saprolegnia ferax)菌丝细胞肌动蛋白的分布与结构的影响

菌丝在pH 5.0—8.0介质中维持顶端生长,Rhodamin-phalloidin荧光探针显示在菌丝顶端都存在F-actin的“帽子”结构;加入EGTA到培养介质中不影响菌丝的顶端生长和actin的“帽子”结构。值得注意的是:菌丝的Rhodamin-phalloidin荧光强度大小与菌丝顶端生长速率成正比;在含有或不含有EGTA的pH5.0培养条件下,菌丝的生长速率均很低,且后部颗粒状的荧光斑点消失;在pH 3.0-4.0培养介质中菌丝生长停止,不但F-actin“帽子”结构消失,整个菌丝荧光也变得非常微弱无法观察,提示酸性pH可引起F-actin的解聚,从而导致生长速率下降甚至生长停止。

水霉Saprolegnia菌丝内细胞颗粒运动的特征

水霉菌丝内细胞颗粒的运动有布朗运动和跳跃运动两种形式，跳跃运动的速度在０．０９至４μｍ／ｓ之间。细胞颗粒运动的速度时制改变．不是匀速运动。在同一根菌丝内细胞颗粒运动的速度与颗粒大小无明显相关性；在不同的菌丝内细胞颗粒运动的速度差异明显。细胞颗粒有共同的运动轨道，运动轨道弯曲，并与细胞长轴基本平行。在同一运动轨道上，不同细胞颗粒的运动速度不同。

缓冲液条件对水霉细胞壁结合Ca^(2+)的影响

用原子吸收光谱研究了pH值、Tris 马来酸缓冲液浓度对水霉 (Saprolegniaferax)顶端生长菌丝细胞壁与Ca2 + 结合的影响 .发现在 pH 3.5～ 6 .0范围内 ,细胞壁结合的Ca2 + 随 pH值升高而增加 ,pH >6 .0时 ,细胞壁结合的Ca2 + 呈下降趋势 .细胞壁结合的Ca2 + 随Tris 马来酸缓冲液浓度升高而增加 ,Tris浓度高于 9mmol/L时 ,细胞壁结合的Ca2 + 则减少 .细胞壁最多可结合Ca2 + 量>6 0 μmol/L .证明细胞壁Ca2 + 确实是水霉顶端生长赖以维持的胞外Ca2 + 库 .

缺Ca^(2+)培养介质对水霉菌丝顶端生长的影响

缺Ｃａ２＋培养介质对水霉菌丝顶端生长的影响窦洁①袁生①陆玲①薛绍白②究竟Ｃａ２＋如何调节菌丝顶端生长？本文利用缺Ｃａ２＋培养介质对此进行了研究．结果既观察到加ＥＧＴＡ的缺Ｃａ２＋培养介质短时间内对菌丝顶端生长的促进作用，又观察到了以往报道中缺Ｃａ２...

Ca^(2+)参与水霉菌丝细胞壁修饰的证据

以细胞壁崩溃酶－Driselase短时间处理水霉（Saprolegniaferax）菌丝，pH5．0时可使原生质从菌丝亚顶端喷出，pH6．0～8．0时则不导致该现象发生；适当浓度EGTA的存在，可提高pH5．0时酶解引起的原生质喷出频率、使pH6．0～8．0时生长菌丝的顶端原生质也喷出、并且喷出多发生在菌丝最顶端。外加CaCl2不抑制菌丝顶端原生质的喷出，排除了Ca2+抑制酶活性的可能。随后的跟踪观察显示，长时间以缺Ca2+培养介质培养菌丝，同样能够导致菌丝顶端原生质喷出。上述研究结果表明，培养介质中Ca2+和H+对菌丝完整性的维持起调节作用，细胞壁上的Ca2+可能参与了水霉菌丝细胞壁物理特性的修饰。

pH影响Ca^(2+)和EGTA对水霉(Saprolegnia ferax)菌丝顶端生长的作用效应

水霉(Saprolegia ferax)菌丝在pH6.0-8.0的OM液体培养基中生长良好,在pH5.0时生长速率有所下降,在pH3.0—4.0时停止生长。短时间(30min)作用研究表明,低浓度的CaCl_2促进pH5.0(1—5mmol/L)和pH6.0(1mmol/L)条件下的菌丝顶端生长,抑制pH7.0—8.0条件下的菌丝生长。1mmol/L以上的EGTA则抑制pH5.0条件下菌丝顶端生长,促进pH6.0—8.0条件下的菌丝顶端生长。但CaCl_2和EGTA都不能使pH3.0—4.0条件下的菌丝恢复生长。长时间(8h)作用跟踪观察表明,2mmol/L EGTA(pH6.8)短时间作用可促进菌丝生长,但随着培养时间延长,则产生抑制作用,并诱导原生质从菌丝最顶端喷出。说明细胞壁Ca^(2+)起着提供胞外Ca^(2+)源和细胞壁修饰成分的双重作用。Ca^(2+)通道阻断剂verapamil对菌丝顶端生长的抑制作用也说明顶端生长所需的Ca^(2+)来自胞外。

辽宁省水霉的分类研究

１９８８～１９９２年从辽宁省的沈阳、辽阳、抚顺、铁岭、丹东、鞍山、盘锦和营口等地的稻田中采集稻田土、稻田水、水稻绵腐病粒等样品，经室内用煮熟露出胚芽的大麻种子诱发、单体分离、纯化培养与形态观察，共鉴定出７属２９种水霉科真菌，其中国内新记录种１０个，即：星状丝囊霉（ＡｐｈａｎｏｍｙｃｅｓｓｔｅｌｌａｔｕｓｄｅＢａｒｙ），含糊绵霉（ＡｃｈｌｙａａｍｂｉｓｅｘｕａｌｉｓＪ．Ｋ．Ｒａｐｅｒ）；显著绵霉（ＡｃｈｌｙａｃｏｎｓｐｉｃｕａＣｏｋｅｒ）；集孢霉（Ｃａｌｙｐｔｒａｌｅｇｎｉａａｃｈｌｙｏｄｅｓ（ＣｏｋｅｒａｎｄＣｏｕｃｈ）Ｃｏｋｄｅｒ）；马格网囊霉（ＤｉｃｔｙｕｃｈｕｓｍａｇｎｕｓｉｉＬｉｎｄｓｔｅｄｔ）；密苏里网囊霉（ＤｉｃｔｙｕｃｈｕｓｍｉｓｓｏｕｒｉｅｎｓｉｓＣｏｕｃｈ），基雄水霉（ＳａｐｒｌｏｅｇｎｉａｈｙｐｏｇｙｎａＰｒｉｎｇｓｈｅｉｍ），拉伯兰水霉（ＳａｐｒｌｏｅｎｉａｌａｐｐｏｎｉｃａＧａｕｍｎｎ），同丝水霉聚团变种（Ｓａｐｒｏｌｅｇｎｉａｍｏｎｏｉｃａｖａｒ．ｇｌｏｍｅｒａｔａＴｉｅｓｅｎｈａｕｓｅｎ）和原绵破囊霉（ＴｈｒａｕｓｔｏｔｈｅｃａｐｒｉｍｏａｃｈｌｙａＣｏｋｅｒａｎｄＣｏｕｃｈ），?

寄生在伞形科上的单轴霜霉新种

本文报道在我国甘肃省祁连山伞形科植物田葛缕子(Carumburiaticum)上采集的单轴霜霉一新种——葛缕子单轴霜霉(PlasmoparacariMengetTaosp.nov.)。它的孢囊梗较短,但主轴粗,末枝长以及孢子囊为淡黄色,与现已报道的伞形科上单轴霜霉其它种类是不相同的。对新种作了汉文及拉丁文描述,并附有形态图。

澜沧江水生丝孢菌资源调查

目的:对澜沧江(中排乡北-云岭乡北,海拔1554m―2003m)水生丝孢菌资源及其多样性进行调查。方法:2015年3月从澜沧江支流及入江口采集沉水腐木700份,采用保湿培养的方法对水生真菌进行培养,基于形态学特征对水生丝孢菌进行鉴定。结果:分离获得水生丝孢菌88种,通过形态学鉴定,鉴定出水生丝孢菌36属58种,30种鉴定到属,未鉴定到种。结论:澜沧江水生丝孢菌资源丰富,物种多样性较高,其中Sporoschisma saccardoi(1.86%)、Periconiaatra(1.86%)出现频率相对较高。海拔对水生丝孢菌多样性有影响。

多肉植物宝典 玲珑素雅的小人之帽

小人之帽（Epithelantha bokei）为仙人掌科，月世界属多肉植物，具萝卜状肉质根，肉质茎呈球状或圆筒状，单生（如将顶端生长点破坏，可长成群生状）；单个球体直径3-5厘米，顶部稍平，成熟后会有绵毛长出，使得顶端膨大，犹如带了一顶帽子；球体遍布细小。

Arabidopsis CNGC14 Mediates Calcium Influx Required for Tip Growth in Root Hairs

Dear Editor, Root hairs create an enormous surface area to aid plants in nutrient and water acquisition, anchorage in the soil, and microbe interactions. Root hairs develop in two stages, including initiation and tip growth. Initiation occurs when a portion of genetically determined epidermal cells develop wall loosening and form a disc-shaped area of cell swelling.