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建立pEGFP—N1-TGF-β1重组质粒和脂质体介导转染原代培养新生猪AEC-Ⅱ方法
1
作者
徐艳
孙波
《中华急诊医学杂志》
CAS
CSCD
北大核心
2016年第1期50-56,共7页
目的构建pEGFP—N1—TGF-β1重组质粒,利用脂质体介导方法将重组质粒转染入原代培养的新生猪肺泡Ⅱ型上皮细胞(AEC-Ⅱ)中,为构建实验性干预急性肺损伤的真核表达载体及转染原代培养AEC-Ⅱ提供方法学基础。方法应用含人TGF—β1CDS...
目的构建pEGFP—N1—TGF-β1重组质粒,利用脂质体介导方法将重组质粒转染入原代培养的新生猪肺泡Ⅱ型上皮细胞(AEC-Ⅱ)中,为构建实验性干预急性肺损伤的真核表达载体及转染原代培养AEC-Ⅱ提供方法学基础。方法应用含人TGF—β1CDS的质粒,设计PCR引物扩增出其CDS片段,将其与空质粒pEGFP—N1用Xhol和EcoRI双酶切,T4DNA Ligase连接双酶切产物,将连接产物转化入DH5α中,培养16h后抽提质粒,PCR法鉴定和测序证实TGF—β1 CDS序列正确。采用Lipofectamine 2000脂质体介导转染,将新生猪AEC—Ⅱ原代培养48h至细胞融合80%-90%,换为无血清培养液;将质粒DNA(pEGFP—N1-TGF—β1重组质粒)和Lipofectamine 2000加至DMEM培养液中混匀,置于培养箱中培养4—6h,更换为完全培养液;转染24—48h后,荧光显微镜下观察细胞EGFP表达水平。结果PCR法及测序鉴定证实TGF—β1 CDS序列正确,重组质粒构建成功,采用Nanovue超微量分光光度计测浓度质粒浓度为195.5μg/mL,转染后48h在荧光显微镜下可见细胞有绿色荧光表达,证实已将其成功转染入原代培养的AEC—Ⅱ中。结论成功构建了pEGFP-N1—TGF-β1真核表达载体,并首次采用脂质体介导方法将重组质粒转染入原代培养的新生猪AEC—Ⅱ中,为开展其他实验性干预ALI的基因转染并进一步研究其修复作用及转归提供方法学基础。
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关键词
肺泡Ⅱ型上皮细胞
原代培养
pEGFP—N
1
-TGF—
β1
重组质粒
转染
原文传递
题名
建立pEGFP—N1-TGF-β1重组质粒和脂质体介导转染原代培养新生猪AEC-Ⅱ方法
1
作者
徐艳
孙波
机构
复旦大学附属儿科医院小儿呼吸与危重病实验室
出处
《中华急诊医学杂志》
CAS
CSCD
北大核心
2016年第1期50-56,共7页
基金
国家自然科学基金(81070057)
文摘
目的构建pEGFP—N1—TGF-β1重组质粒,利用脂质体介导方法将重组质粒转染入原代培养的新生猪肺泡Ⅱ型上皮细胞(AEC-Ⅱ)中,为构建实验性干预急性肺损伤的真核表达载体及转染原代培养AEC-Ⅱ提供方法学基础。方法应用含人TGF—β1CDS的质粒,设计PCR引物扩增出其CDS片段,将其与空质粒pEGFP—N1用Xhol和EcoRI双酶切,T4DNA Ligase连接双酶切产物,将连接产物转化入DH5α中,培养16h后抽提质粒,PCR法鉴定和测序证实TGF—β1 CDS序列正确。采用Lipofectamine 2000脂质体介导转染,将新生猪AEC—Ⅱ原代培养48h至细胞融合80%-90%,换为无血清培养液;将质粒DNA(pEGFP—N1-TGF—β1重组质粒)和Lipofectamine 2000加至DMEM培养液中混匀,置于培养箱中培养4—6h,更换为完全培养液;转染24—48h后,荧光显微镜下观察细胞EGFP表达水平。结果PCR法及测序鉴定证实TGF—β1 CDS序列正确,重组质粒构建成功,采用Nanovue超微量分光光度计测浓度质粒浓度为195.5μg/mL,转染后48h在荧光显微镜下可见细胞有绿色荧光表达,证实已将其成功转染入原代培养的AEC—Ⅱ中。结论成功构建了pEGFP-N1—TGF-β1真核表达载体,并首次采用脂质体介导方法将重组质粒转染入原代培养的新生猪AEC—Ⅱ中,为开展其他实验性干预ALI的基因转染并进一步研究其修复作用及转归提供方法学基础。
关键词
肺泡Ⅱ型上皮细胞
原代培养
pEGFP—N
1
-TGF—
β1
重组质粒
转染
Keywords
Alveolar epithelium type Ⅱ cell
Primary culture
pegfp-n1-tgf-β1 recombinantplasmid
Transfection
分类号
R725.6 [医药卫生—儿科]
原文传递
题名
作者
出处
发文年
被引量
操作
1
建立pEGFP—N1-TGF-β1重组质粒和脂质体介导转染原代培养新生猪AEC-Ⅱ方法
徐艳
孙波
《中华急诊医学杂志》
CAS
CSCD
北大核心
2016
0
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参考文献
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