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Recombination function and recombination kinetics of Escherichia coli single-stranded DNA-binding protein 被引量:1
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作者 Ran Chai Chaohui Zhang +4 位作者 Fang Tian Huiru Li Qianlong Yang Andong Song Liyou Qiu 《Science Bulletin》 SCIE EI CAS CSCD 2016年第20期1594-1604,共11页
It is unknown whether the ss DNA-binding-protein(SSB) possesses the ability to catalyze DNA recombination.We investigated the recombination function of SSB and the recombination kinetics of Escherichia coli using a ne... It is unknown whether the ss DNA-binding-protein(SSB) possesses the ability to catalyze DNA recombination.We investigated the recombination function of SSB and the recombination kinetics of Escherichia coli using a new transformation method with a modified double-layered plate.We found that SSB catalysed intermolecular recombination in vitro.Its intermolecular recombination rate versus substrate concentration or homologous sequence length fitted the Hill equation,and while the plasmid intramolecular recombination rate versus substrate concentration fitted a positively linear correlation,the dominant intermolecular recombination was a non-homologous recombination in vivo,similar to Rec A.However,ssb-dependent recombination occurred later and at a lower recombination rate than the rec A-dependent,probably because ssb expression was about two-fold lower than rec A during the E.coli earlier growth stage.The affinity to substrate and the recombination efficiency of SSB was lower than Rec A,whereas SSB enhanced the catalytic efficiency of Rec A.Knocking out both rec A and ssb led to loss of recombination.Our results confirmed that as SSB has the recombination function itself as an allosteric enzyme,rec Aindependent recombination in E.coli should be ssb-dependent.ssb-dependent recombination may be the third DNA double-strand break repair pathway,in addition to rec Adependent recombination and non-homologous end joining. 展开更多
关键词 ss DNA-binding-protein Homologous recombination Non-homologous recombination recombination kinetics
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工业微生物基因组编辑技术的研究进展 被引量:1
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作者 朱林江 李崎 《生物工程学报》 CAS CSCD 北大核心 2015年第3期338-350,共13页
近年来,基因组范围的高效编辑技术发展迅速,对工业微生物基因组的改造效率不断提升,彻底改变了以"一次操作、一个抗性基因、一个修饰位点"为特征的传统遗传操作模式,实现了基因组上多重位点的同步编辑,精确高效且无需抗生素... 近年来,基因组范围的高效编辑技术发展迅速,对工业微生物基因组的改造效率不断提升,彻底改变了以"一次操作、一个抗性基因、一个修饰位点"为特征的传统遗传操作模式,实现了基因组上多重位点的同步编辑,精确高效且无需抗生素辅助的插入替换或删除,以及大片段基因组DNA的剪切-粘贴等。这些技术的应用,能够高效构建优良性能的生产菌株,必将推动传统发酵产业的革新,促进以新能源和新材料为基础的新型工业生物技术的发展。本文针对这些新技术的原理和特点,结合一些典型应用实例,进行分析和总结,希望能为工业微生物的改造与构建提供参考与借鉴。 展开更多
关键词 基因组编辑 寡核苷酸介导的重组 成簇的规律间隔的短回文重复序列 二型内含子 进化工程
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大肠杆菌O157∶H7Ⅲ型分泌系统的缺陷突变株对HeLa细胞黏附能力的影响 被引量:1
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作者 王玉瑞 廖翔 +3 位作者 周围 戴红梅 宋婷 梁龙 《军事医学》 CAS CSCD 北大核心 2014年第10期795-798,共4页
目的构建O157∶H7 EDL933菌株Ⅲ型分泌系统(T3SS)缺陷突变株ΔescR,感染HeLa细胞后检测其黏附能力。方法通过重叠延伸PCR扩增出中间为卡那霉素抗性基因,两侧为escR基因上下游同源序列的重组线性DNA片段,电击转入含pKD46的EDL933感受态... 目的构建O157∶H7 EDL933菌株Ⅲ型分泌系统(T3SS)缺陷突变株ΔescR,感染HeLa细胞后检测其黏附能力。方法通过重叠延伸PCR扩增出中间为卡那霉素抗性基因,两侧为escR基因上下游同源序列的重组线性DNA片段,电击转入含pKD46的EDL933感受态细胞中,escR基因被kan基因替换而缺失。绘制野生株与ΔescR生长曲线,并利用免疫荧光观察两株细菌对HeLa细胞的黏附能力。结果获得缺陷突变株ΔescR,相较于野生株,该突变株在DMEM(10%FBS)培养基中生长速度以及对HeLa细胞的黏附能力明显下降。结论 T3SS结构蛋白escR基因的缺失破坏了EDL933 T3SS的形成,影响了该菌株黏附能力,其构建为后续研究T3SS奠定了基础。 展开更多
关键词 大肠杆菌 0157:H7 Ⅲ型分泌系统 escR基因 HELA细胞 λRed同源重组
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