目的分离人源γ-微管蛋白环形复合物(γ-tubulin ring complex,γTuRC)。方法利用凝胶过滤层析技术分离人源293FT细胞裂解产物;利用免疫印迹检测γTuRC和γ-微管蛋白小复合物(γ-tubulin small complex,γTuSC)所在的洗脱组分,实现复合...目的分离人源γ-微管蛋白环形复合物(γ-tubulin ring complex,γTuRC)。方法利用凝胶过滤层析技术分离人源293FT细胞裂解产物;利用免疫印迹检测γTuRC和γ-微管蛋白小复合物(γ-tubulin small complex,γTuSC)所在的洗脱组分,实现复合物与游离蛋白分离。结果γTuRC复合物组成型组分γ-微管蛋白(γ-tubulin)、γ-微管蛋白复合物蛋白2(γ-tubulin complex protein 2,GCP2)、GCP3和GCP4在第4洗脱组分(4#)被洗脱富集,该组分相对分子质量约为2×106;γTuSC复合物组成型组分γ-tubulin、GCP2、GCP3蛋白在14#洗脱组分被洗脱富集,该组分相对分子质量约为3.1×105;未掺入的游离蛋白组分在18#洗脱组分后被洗脱下来。非变性凝胶电泳可在相应组分中检测到γTuRC和γTuSC复合物。结论γTuRC复合物在凝胶过滤层析4#洗脱组分得到富集;γTuSC复合物在14#洗脱组分得到富集。上述复合物与游离蛋白成功分离,可用于后续复合物组装研究。展开更多
目的分离纯化碧根果致敏原Car i 1,并对其结构进行表征鉴定。方法以新鲜碧根果果仁为原料,通过粉碎、脱脂、浸提、粗分级、凝胶过滤层析,对碧根果致敏原蛋白Car i 1进行分离纯化。结合十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳、液相色谱-串...目的分离纯化碧根果致敏原Car i 1,并对其结构进行表征鉴定。方法以新鲜碧根果果仁为原料,通过粉碎、脱脂、浸提、粗分级、凝胶过滤层析,对碧根果致敏原蛋白Car i 1进行分离纯化。结合十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳、液相色谱-串联质谱法和免疫印迹法3种方法对Cari1进行鉴定,并通过圆二色谱仪与紫外分光光度计表征其二、三级结构。结果本方法纯化获得碧根果致敏原Cari1,单轮制备量可达5 mg以上,且纯度大于95%,蛋白质高级结构未被破坏,能够被全部3名碧根果过敏患者的血清准确识别。结论该纯化方法技术路线简单、设备要求低且单次制备量高,总得率可达65%,操作便捷,为碧根果致敏原Car i 1的相关研究奠定了物质基础。展开更多
文摘目的分离人源γ-微管蛋白环形复合物(γ-tubulin ring complex,γTuRC)。方法利用凝胶过滤层析技术分离人源293FT细胞裂解产物;利用免疫印迹检测γTuRC和γ-微管蛋白小复合物(γ-tubulin small complex,γTuSC)所在的洗脱组分,实现复合物与游离蛋白分离。结果γTuRC复合物组成型组分γ-微管蛋白(γ-tubulin)、γ-微管蛋白复合物蛋白2(γ-tubulin complex protein 2,GCP2)、GCP3和GCP4在第4洗脱组分(4#)被洗脱富集,该组分相对分子质量约为2×106;γTuSC复合物组成型组分γ-tubulin、GCP2、GCP3蛋白在14#洗脱组分被洗脱富集,该组分相对分子质量约为3.1×105;未掺入的游离蛋白组分在18#洗脱组分后被洗脱下来。非变性凝胶电泳可在相应组分中检测到γTuRC和γTuSC复合物。结论γTuRC复合物在凝胶过滤层析4#洗脱组分得到富集;γTuSC复合物在14#洗脱组分得到富集。上述复合物与游离蛋白成功分离,可用于后续复合物组装研究。
文摘目的分离纯化碧根果致敏原Car i 1,并对其结构进行表征鉴定。方法以新鲜碧根果果仁为原料,通过粉碎、脱脂、浸提、粗分级、凝胶过滤层析,对碧根果致敏原蛋白Car i 1进行分离纯化。结合十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳、液相色谱-串联质谱法和免疫印迹法3种方法对Cari1进行鉴定,并通过圆二色谱仪与紫外分光光度计表征其二、三级结构。结果本方法纯化获得碧根果致敏原Cari1,单轮制备量可达5 mg以上,且纯度大于95%,蛋白质高级结构未被破坏,能够被全部3名碧根果过敏患者的血清准确识别。结论该纯化方法技术路线简单、设备要求低且单次制备量高,总得率可达65%,操作便捷,为碧根果致敏原Car i 1的相关研究奠定了物质基础。