玻璃化快速冷冻仪在猪MⅡ期卵母细胞玻璃化冷冻中的应用

为了提高猪成熟卵母细胞玻璃化冷冻效果,应用玻璃化快速冷冻仪(Vit-Master)进行猪成熟卵母细胞的冷冻,以观察其冷冻效果。结果显示:浆状液氮降温速率[(21 345±l768)℃/min]远远高于普通液氮降温速率[(11 982±1 936)℃/min];各组冻后形态完整率无显著差异;冻后存活率为:使用玻璃化快速冷冻仪的不同浓度保护剂组[A':(57.87±10.66)%、B':(76.5±10.33%)、C':(79.07±14.90)%和D':(81.94±6.98%)]均分别高于对应的不使用玻璃化快速冷冻仪组[A:(49.73±2.91)%、B:(60.63±12.45)%、C:(71.33±14.38)%和D:(78.50±7.40)%],但均无显著差异,B'和C'组均高于C和D组,但差异不显著,A和A'组均显著低于B'、C'和D'组。因此,通过使用Vit-Master冷冻装置提高冷冻速率,可以降低冷冻保护剂使用浓度并提高冻后存活率。

玻璃化冷冻对猪GV期卵母细胞成熟及发育能力的影响

为了获得最适的冷冻猪GV期卵母细胞的冷冻保护液配方和最适冷冻载体,本研究就目前应用最多的7种冷冻保护液配方进行筛选,并且比较3种不同冷冻载体冷冻卵母细胞的效果差异。结果表明:7组冷冻保护液对GV期卵母细胞有低毒性作用,各组分裂率、囊胚率、囊胚细胞数均低于对照组,综合各组指标选取3组对猪MII期卵母细胞的发育能力损伤最小的冷冻保护剂,应用GMP管对其冷冻保护效果进行比较,发现第6组的极体率29.47%,第5组的极体率23.54%与第3组的极体率8.28%相比差异显著(P<0.05),且第5组的存活率、极体率与第3组相比差异显著(P<0.05)。综合考虑,选取第5组HM+7.5%(DMSO+EG),HM+15%(DMSO+EG)+0.5 mol/L Su组作为冷冻保护液来比较3种不同冷冻裁体冷冻卵母细胞的效果差异,发现半麦管冻融后的卵母细胞存活率高达54.11%与OPS管、GMP管的33.11%和26.79%差异显著(P<0.05),半麦管法更适合GV期猪卵母细胞的玻璃化冷冻。

玻璃化冷冻对猪MII期卵母细胞发育能力的影响

以MII期卵母细胞作为试验材料,应用玻璃化冷冻方法,就目前应用最多的7组冷冻保护液配方进行筛选,并且比较3种不同冷冻载体冷冻卵母细胞的效果。结果发现:7组冷冻保护液对MII期卵母细胞有低毒性作用,各组分裂率、囊胚率、囊胚细胞数均低于对照组;综合各组指标,选取3组对猪MII期卵母细胞的发育能力损伤最小的冷冻保护剂,应用GMP管对其冷冻保护效果进行比较,发现第7组冷冻保护液配方EFS不适于MII期卵母细胞的冷冻,其形态正常率、分裂率分别为1.19%、0,与第3组、第6组形态正常率、分裂率(59.48%、53.55%;24.19%、35.02%)差异显著(P<0.05)。综合考虑,选取HM+7.5%(DMSO+EG),HM+17%(DMSO+EG)+0.4 mol/L Su作为冷冻保护剂来比较3种不同冷冻载体冷冻卵母细胞的效果差异,发现半麦管冻融后MII期卵母细胞的分裂率高达53.67%,与OPS法的29.33%及GMP法的35.00%相比差异显著(P<0.05),半麦管法更适合MII期猪卵母细胞的玻璃化冷冻。