为了解山东地区Kilham细小病毒(kilham rat virus,KRV)的流行情况并探究其分子生物学特征,本试验从某疑似感染KRV的大鼠养殖场分离病毒并对其致病性进行研究。通过观察患病大鼠的临床症状和病理变化并使用PCR方法检测病料确定是否为KRV...为了解山东地区Kilham细小病毒(kilham rat virus,KRV)的流行情况并探究其分子生物学特征,本试验从某疑似感染KRV的大鼠养殖场分离病毒并对其致病性进行研究。通过观察患病大鼠的临床症状和病理变化并使用PCR方法检测病料确定是否为KRV病毒感染。将阳性病料接种到大鼠神经胶质瘤细胞C6上分离KRV并对其VP2全长测序并构建进化树,通过病毒TCID 50测定、血凝和血凝抑制试验及动物回归试验确定分离株的致病性。结果显示养殖场中流产母鼠子宫体积变小,子宫内胎儿全部死亡或部分死亡。将阳性病料接种于C6细胞上,盲传三代后出现明显病变,对分离株VP2基因进行测序发现该分离株与LG/HN/CHN/2016株相似度最高为98.51%,与其他目前已知分离株的VP2同源性在95.20%~97.31%之间。分离株传到7代后的TCID 50为105.56/0.1 mL,血凝效价为1∶1280,血凝抑制效价为27,证明分离株确为KRV,将其命名为KRV/QD/2022。动物回归试验证明该分离株能感染大鼠并导致大鼠出现流产、繁殖障碍等特征性病变。上述结果显示,本研究成功分离出了一株KRV细小病毒并进行了系统的研究,为该病毒的诊断和预防提供了一定的依据。展开更多
目的建立用大鼠胶质瘤细胞系(Rat glial cell line C6)替代大鼠原代胚细胞(primary rat embryocells,RE)培养大鼠细小病毒(Toolan virus,H-1)的方法。方法 将0.8 mL H-1病毒接种C6细胞(75T培养瓶,细胞接种量为2×105/mL,培养过夜)...目的建立用大鼠胶质瘤细胞系(Rat glial cell line C6)替代大鼠原代胚细胞(primary rat embryocells,RE)培养大鼠细小病毒(Toolan virus,H-1)的方法。方法 将0.8 mL H-1病毒接种C6细胞(75T培养瓶,细胞接种量为2×105/mL,培养过夜),待细胞病变CPE达++~+++时,用免疫荧光(FITC)鉴定所培养病毒的抗原,用血球凝集试验(HA)测定培养物上清效价,用DNA测序鉴定所培养的病毒,用96孔板培养法测定H-1病毒的TCID50。结果H-1在接种到C6细胞的第3~4天,细胞发生明显的病变,CPE可达++++,FITC鉴定呈H-1抗原阳性,病毒的培养上清中HA效价为1∶320。测序结果表明:该病毒序列与NCBI中H-1序列同源性达99%,确定为H-1病毒。收获的H-1的TCID50为103.2/0.1 mL。结论用大鼠胶质瘤细胞系(C6)可以替代大鼠原代胚细胞(RE)进行大鼠细小病毒的培养。展开更多
目的建立用大鼠胶质瘤细胞系(Rat glial cell line C6)替代大鼠原代胚细胞(Primary rat embryo cells,RE)来培养大鼠细小病毒(Kilham Rat Virus,KRV)的方法。方法将500 TCID50 KRV培养物接种到75T-C6细胞培养瓶中(细胞接种量为2×10...目的建立用大鼠胶质瘤细胞系(Rat glial cell line C6)替代大鼠原代胚细胞(Primary rat embryo cells,RE)来培养大鼠细小病毒(Kilham Rat Virus,KRV)的方法。方法将500 TCID50 KRV培养物接种到75T-C6细胞培养瓶中(细胞接种量为2×105/mL),培养过夜,待细胞病变CPE达++~+++时,分别用免疫荧光(FITC)鉴定所培养病毒的特异抗原,用血球凝集试验(HA)测定培养物上清的效价,用DNA测序鉴定所培养的病毒,最后用96孔板培养法测定KRV的TCID50。结果 KRV在接种到C6细胞的第4~5天,细胞发生明显的病变,CPE可达++++,FITC鉴定呈KRV抗原阳性,病毒的培养上清中HA效价为1∶5 120,测序结果表明,该病毒序列与NCBI中KRV序列同源性达98%,确定为KRV。收获的KRV的TCID50为104.6/0.1 mL。结论通过对C6细胞系培养KRV方法的标准化和对所培养病毒的一系列鉴定表明,用大鼠胶质瘤细胞系可以替代大鼠原代胚细胞系进行大鼠细小病毒的培养。展开更多
文摘目的建立用大鼠胶质瘤细胞系(Rat glial cell line C6)替代大鼠原代胚细胞(primary rat embryocells,RE)培养大鼠细小病毒(Toolan virus,H-1)的方法。方法 将0.8 mL H-1病毒接种C6细胞(75T培养瓶,细胞接种量为2×105/mL,培养过夜),待细胞病变CPE达++~+++时,用免疫荧光(FITC)鉴定所培养病毒的抗原,用血球凝集试验(HA)测定培养物上清效价,用DNA测序鉴定所培养的病毒,用96孔板培养法测定H-1病毒的TCID50。结果H-1在接种到C6细胞的第3~4天,细胞发生明显的病变,CPE可达++++,FITC鉴定呈H-1抗原阳性,病毒的培养上清中HA效价为1∶320。测序结果表明:该病毒序列与NCBI中H-1序列同源性达99%,确定为H-1病毒。收获的H-1的TCID50为103.2/0.1 mL。结论用大鼠胶质瘤细胞系(C6)可以替代大鼠原代胚细胞(RE)进行大鼠细小病毒的培养。
文摘目的建立用大鼠胶质瘤细胞系(Rat glial cell line C6)替代大鼠原代胚细胞(Primary rat embryo cells,RE)来培养大鼠细小病毒(Kilham Rat Virus,KRV)的方法。方法将500 TCID50 KRV培养物接种到75T-C6细胞培养瓶中(细胞接种量为2×105/mL),培养过夜,待细胞病变CPE达++~+++时,分别用免疫荧光(FITC)鉴定所培养病毒的特异抗原,用血球凝集试验(HA)测定培养物上清的效价,用DNA测序鉴定所培养的病毒,最后用96孔板培养法测定KRV的TCID50。结果 KRV在接种到C6细胞的第4~5天,细胞发生明显的病变,CPE可达++++,FITC鉴定呈KRV抗原阳性,病毒的培养上清中HA效价为1∶5 120,测序结果表明,该病毒序列与NCBI中KRV序列同源性达98%,确定为KRV。收获的KRV的TCID50为104.6/0.1 mL。结论通过对C6细胞系培养KRV方法的标准化和对所培养病毒的一系列鉴定表明,用大鼠胶质瘤细胞系可以替代大鼠原代胚细胞系进行大鼠细小病毒的培养。