氯化镧水杨酸8-羟基喹啉配合物抑制BGC-803细胞增殖及核分裂的研究

目的：观察氯化镧水杨酸8－羟基喹啉配合物（La（C7 H5 O3）2·（C9 H6 NO）·2H2 O）对体外培养的BGC －803细胞的生长抑制作用，并进一步探讨其作用机制。方法以BGC－803细胞为研究对象，应用MTT法检测细胞增殖活性、HE染色法检测细胞分裂、Annexin V－FITC染色法检测细胞凋亡率，以确定不同浓度配合物对细胞增殖和核分裂的影响。结果不同浓度La（C7H5O3）2·（C9H6NO）·2H2O处理BGC－803细胞24～72 h后，细胞增殖显著受到抑制，并呈浓度及时间依赖性；1．0、5．0、10．0μg/ml La（C7 H5 O3）2·（C9 H6 NO）·2H2 O处理24 h后，BGC－803细胞G0/G1期细胞数量显著增加，S期细胞数量显著降低（P＜0．01）；各浓度组细胞凋亡率均显著增加（P＜0．01）。结论 La（C7H5O3）2·（C9 H6 NO ）·2H2 O对BGC－803细胞具有生长抑制作用，其机制与阻滞细胞周期导致诱导凋亡有关。

氯化镧水杨酸和8-羟基喹啉配合物La(C_7H_5O_3)_2·(C_9H_6NO)对粟酒裂殖酵母细胞生长和胞质分裂的影响

目的探讨氯化镧水杨酸和8-羟基喹啉配合物〔La(C7H5O3)2.(C9H6NO),即La(Sal)2(Qu)〕对粟酒裂殖酵母(S.pombe)的生长及细胞分裂的影响。方法 La(Sal)2(Qu)2,4,6,8和10 mg.L-1处理细胞。应用恒温振荡培养和固体培养MTT法观察La(Sal)2(Qu)对S.pombe生长的影响;胞质分裂抑制实验观察La(Sal)2(Qu)对S.pombe细胞形态和胞质分裂的影响;流式细胞术检测对细胞DNA含量的影响。结果 La(Sal)2(Qu)6,8和10 mg.L-1在恒温振荡培养S.pombe8 h,可抑制S.pombe细胞的生长,生长率从正常对照组的(104.9±8.4)%分别降低至(36.1±2.2)%,(35.2±2.6)%和(37.6±2.8)%(P<0.01)。La(Sal)2(Qu)4 mg.L-1可抑制细胞分裂,不仅具有1个隔膜的细胞数目明显增多(29%),而且可见具有2个或3个隔膜的细胞;La(Sal)2(Qu)2,4和6 mg.L-1使细胞DNA含量从1 N增加到2 N。结论 La(Sal)2(Qu)可影响S.pombe细胞的生长和胞质分裂。

镧与8-羟基喹啉水杨酸配合物的热化学研究

目的:由七水氯化镧与水杨酸、8-羟基喹啉反应合成多元混合配合物,并测定该合成反应的标准摩尔反应焓以及配合物的标准摩尔生成焓。方法:应用溶解量热法分别测定了七水氯化镧、水杨酸、8-羟基喹啉和配合物在298.15 K、混合量热溶剂(VDMF:VEtOH:VHClO4=1:1:0.5)中的标准摩尔溶解焓。通过设计热化学循环,根据盖斯定律计算了合成反应的标准摩尔反应焓以及配合物的标准摩尔生成焓。结果:该配合物的化学式是La(C7H5O3)2?(C9H6NO)。各物质的溶解焓分别为△sH mΘ[LaCl3?7H2O(s),298.15 K]=-96.45±0.18 kJ·mol-1,△sH mΘ[2 C7H6O3(s),298.15 K]=14.99±0.17 kJ?mol-1,△sH mΘ[C9H7NO(s),298.15 K]=-3.86±0.06 kJ?mol-1及?sH mΘ[La(C7H5O3)2·(C9H6NO)(s),298.15 K]=-117.78±0.11 kJvmol-1。反应LaCl3?7H2O(s)+2C7H6O3(s)+C9H7NO(s)=La(C7H5O3)2·(C9H6NO)(s)+3HCl(g)+7H2O(l)的标准摩尔反应焓为91.57±0.33 kJ·mol-1。La(C7H5O3)2?(C9H7NO)(s)的标准摩尔生成焓为△fHmΘ[La(C7H5O3)2·(C9H6NO)(s),298.15 K]=-2076.5±3.9 kJ·mol-1。

稀土水杨酸8-羟基喹啉三元配合物对黑曲霉活性的影响

分别采用杯碟法研究水杨酸(Hsal)、8-羟基喹啉(Hhq)及其稀土三元配合物对黑曲霉的抑菌作用,以及抑菌持久稳定性进行研究。结果表明:水杨酸没有抑菌作用,8-羟基喹啉抑菌作用较强,但抑菌效果随时间的推移明显减弱。抑菌作用不明显的稀土(RE=Pr、Gd)离子与配体形成配合物后,其抑菌效果明显增强且具有持久稳定性。配合物Pr(sal)2hq、Gd(sal)2hq和配体8-羟基喹啉的最小抑菌浓度分别位于0.50～0.25,1.00～0.50,0.50～0.25mmol/L;最小杀菌浓度分别为2,3,5mmol/L。

8-羟基喹啉与水杨酸铁三元配合物的合成表征与抑菌研究

以水杨酸、8-羟基喹啉为配体与铁(Ⅲ)合成了一种新型未见文献报道的三元配合物,用元素分析、热重差热分析、红外光谱、紫外可见光谱等手段对其进行表征,确定其化学组成为[Fe(C7H5O3)2(C9H6NO)].水杨酸脱质子以酸根形式与Fe(Ⅲ)离子成键,酚羟基不参与配位,而8-羟基喹啉以酚羟基氧和杂环上的氮原子双齿配位,形成五元螯环.采用分光光度法研究其对大肠杆菌生长的作用,并绘出其生长曲线,发现配合物浓度低于2mmol·L-1时,促进大肠杆菌的生长,高于2 mmol·L-1时抑制其生长,浓度越大抑制作用越强,即配合物对大肠杆菌的生长具有双向生物效应.

希土水杨酸与8─羟基喹啉三元配合物研究

合成了六种希土（ＲＥ）－水杨酸（Ｈ２ｓａｌ）－８－羟基喹啉（Ｈｈｑ）三元固体配合物，其通式为ＲＥ（Ｈｓａｌ）２·ｈｑ（ＲＥ＝Ｙ，Ｌａ，Ｎｄ，Ｓｍ，Ｈｏ，Ｅｒ）．通过元素分析、摩尔电导、ＩＲ、Ｆａｒ－ＩＲ、ＵＶ－Ｖｉｓ、ＴＧ－ＤＴＡ分析，研究了配合物的组成、性质和成键特性．通过抑菌试验表明配合物对于霉菌具有抑真菌能力．

8-羟基喹啉镧两亲性配合物LB膜的双层电致发光器件

以具有不同层数的两亲配合物二 [2 -( N -十六烷基氨基甲酰基 ) -8-羟基喹啉 ]合镧 [La( HQ) 2 Cl]的 LB膜为发光层 ,PBD为电子传输层 ,制备了双层结构的电致发光 ( EL)器件 :ITO/LB膜 /PBD/Al.器件产生黄绿色注入式发光 .LB膜的层数和沉积压对器件的性能具有重要影响 .在 1 6V激发电压下 ,5 ,1 1和 2 1层LB膜双层 EL器件的电流密度分别为 4 8,2 9和 1 6.4 m A/cm2 ,启亮电压阀值为 7.5 ,8.5和 9.5 V.器件的亮度随电流密度和驱动电压的增加而增加 .在相同偏压下 ,2 1层 LB膜 EL器件的亮度大于 5和 1 1层 LB膜的器件 .在 2 5 m N/m沉积的 LB膜制备的 EL器件具有较高的亮度 ( 1 2 1 9cd/m2 )和击穿电压 .

镧三元配合物的合成及其抑菌活性

在常温下,以乙醇为溶剂,用肉桂酸、8-羟基喹啉和七水合氯化镧反应合成了镧的三元配合物,并对其进行络合滴定、摩尔电导率、元素分析、红外光谱、紫外光谱、热重-差热分析、氢谱等测试,推测其化学组成为LaL1(L2)2·H2O(其中,HL1为肉桂酸;HL2为8-羟基喹啉)。对其进行大肠杆菌、金黄色葡萄球菌、白色葡萄球菌、枯草芽孢杆菌和藤黄微球菌抑菌性能的测试,结果表明,镧离子、8-羟基喹啉和配合物均有抑菌活性。配合物抑菌效果明显优于其配体。

[Fe(C_7H_5O_3)(C_9H_6NO)_2]三元配合物的合成及抑菌性能

以水杨酸、8-羟基喹啉为配体与铁(Ⅲ)合成了三元配合物,用元素分析、红外光谱、紫外可见光谱、荧光光谱对其进行表征,确定其化学组成为[Fe(C7H5O3)(C9H6NO)2]。其中,水杨酸脱质子以羧酸根与Fe3+成键,酚羟基不参与配位,而8-羟基喹啉脱质子以酚羟基氧和杂环上的氮原子双齿配位,形成五元螯环。配合物在整个可见光区都有较强吸收,粉末及其浓溶液均呈黑色,稀溶液呈紫色。以300 nm为激发波长时,三元配合物在409 nm处有较强的发射荧光。采用分光光度法研究其对大肠杆菌生长的作用,配合物浓度低于2 mmol/L时,促进大肠杆菌的生长,高于2 mmol/L时抑制其生长,浓度越大抑制作用越强,即配合物对大肠杆菌的生长具有双向生物效应。

三元配合物[Pr(C_7H_5O_3)_2·(C_9H_6NO)]的光谱表征

将六水氯化镨,水杨酸与8-羟基喹啉三种物质一起反应,制得了一种新的稀土化合物,通过元素分析、热重差热分析、紫外光谱、红外光谱、化学分析等手段确定了配合物的组成为[Pr(C7H5O3)2·(C9H6NO)],并对该配合物的结构与性质进行了推测.在配位过程中,水杨酸脱掉羧基上的质子以酸根的形式与稀土离子配位而酚羟基氧没有配位,8-羟基喹啉脱质子后以羟基氧和氮原子与稀土离子形成螯环.

Nd(Hsal)_2·hq三元配合物薄膜的制备

采用化学改性sol gel提拉法制备Nd(Hsal) 2·hq三元配合物薄膜 ,并对薄膜的性能进行研究 .在薄膜制备中 ,添加适量的表面活性剂可以极大地改善成膜的均匀性和所成膜的表面光洁度 ,且成膜的可重复性很好 .光声光谱研究结果表明 ,Nd3 + 水合离子、Nd2 O3 纳米薄膜中Nd3 + 和Nd(Hsal) 2·hq三元配合物薄膜中Nd3 + 的环境各不相同 ,其超灵敏跃迁峰有较大差别 .

三元配合物[La(C_9H_6NO)_2(C_6H_5COO)]·H_2O的热化学研究

按照文[1]献合成了三元配合物[La(C_9H_6NO)_2(C_6H_5COO)]·H_2O,通过红外光谱进行表征.利用Hess定理设计了配位反应的热化学循环,并在常压、298.15 K下,分别测定了七水氯化镧、苯甲酸、8-羟基喹啉以及配合物在混合溶剂中的溶解焓,求出了298.15 K时配位反应的反应焓,并进一步计算出了三元配合物[La(C_9H_6NO)_2(C_6H_5COO)]·H_2O的标准摩尔生成焓.

La(TCA)(C_9H_6NO)_2配合物的热化学研究

用溶解量热法,在自行研制的具有恒定温度环境的新型反应量热计中,测定La (TCA)3·3H2O(s) 、C9H7NO(s)、La (TCA)(C9H6NO)2 (s) 和CCl3COOH(s)在4mol/L HCl、二甲亚砜和无水乙醇混合溶剂中的溶解焓,再根据盖斯定律设计一个热化学循环,计算得到三氯醋酸镧与 8-羟基喹啉反应的反应焓DrHmq (298.15K)= - 13.181kJ/mol,并求出La (TCA)(C9H6NO)2 (s)的标准生成焓DfHmq [La (TCA) (C9H6NO)2 ,s, 298.15K] = -1375.6 kJ/mol。

La(C_7H_5O_3)_2·(C_9H_6NO)的合成及热化学研究

研究由七水氯化镧与水杨酸、8-羟基喹啉反应合成镧与水杨酸、8-羟基喹啉多元混合配合物,并对该配合物进行表征。测定该合成反应的标准摩尔反应焓以及配合物的标准摩尔生成焓。通过红外光谱、元素分析、摩尔电导率、差热热重分析以及化学分析等方法来确定配合物的组成。应用溶解量热法分别测定了七水氯化镧、水杨酸、8-羟基喹啉和配合物在298.15 K、混合量热溶剂(VDMF∶VEtOH∶VHClO4=1∶1∶0.5)中的标准摩尔溶解焓。通过设计热化学循环,根据盖斯定律计算了合成反应的标准摩尔反应焓以及配合物的标准摩尔生成焓。该配合物的分子式是La(C7H5O3)2.(C9H6NO)。各物质的溶解焓分别为ΔSHΘm[LaCl3.7H2O(s),298.15 K]=-96.45±0.18 kJ.mol-1,ΔSHΘm[2 C7H6O3(s),298.15 K]=14.99±0.17 kJ.mol-1,ΔSHΘm[C9H7NO(s),298.15 K]=-3.86±0.06 kJ.mol-1及ΔSHΘm[La(C7H5O3)2.(C9H6NO)(s),298.15 K]=-117.78±0.11 kJ.mol-1。反应LaCl3.7H2O(s)+2C7H6O3(s)+C9H7NO(s)=La(C7H5O3)2.(C9H6NO)(s)+3HCl(g)+7H2O(l)的标准摩尔反应焓为91.57±0.33 kJ.mol-1。La(C7H5O3)2.(C9H7NO)(s)的标准摩尔生成焓为ΔSHΘm[La(C7H5O3)2.(C9H6NO)(s),298.15 K]=-2076.5±3.9 kJ.mol-1。

La(Sal)_2(Qu)对重组Fas基因酵母促凋亡作用

目的观察氯化镧水杨酸8-羟基喹啉三元稀土配合物[La(C7H5O3)2.(C9H6NO)],对重组Fas基因酵母的促凋亡作用。方法抽提Jurkat细胞RNA;逆转录-聚合酶链反应(RT-PCR)制备Jurkat细胞的cDNA;PCR扩增人Fas基因;将人Fas基因克隆到pREP3X-HA质粒中构建pREP3X-HA-Fas穿梭载体,电转化穿梭载体到野生型粟酒裂殖酵母细胞中;应用蛋白印迹法(Western blotting)鉴定蛋白表达产物;应用La(Sal)2(Qu)诱导重组Fas酵母产生凋亡应答。结果经原位末端标记(TUNEL)法显微计数检测发现,对照组细胞膜泡形成、细胞核碎裂和细胞核溶解的细胞各占计数细胞总数的2.80%、3.74%和2.80%,而处理组分别为26.67%、22.86%和13.33%,差异有统计学意义(P<0.01);流式细胞术检测发现,对照组细胞凋亡检出率为1.24%,而处理组为50.17%,差异有统计学意义(P<0.01)。结论 La(Sal)2(Qu)可能通过Fas诱导酵母细胞凋亡。