疑似猪繁殖呼吸障碍综合征病例分析

2002年初，某规模化猪场暴发一起以母猪产弱仔，流产，早产，体温升高，耳部及腹部皮肤发绀等症状，剖检变化，疫苗接种，诊断为猪系列呼吸障碍综合征（PRRS），现报告如下。

运输引起猪繁殖呼吸障碍综合征的诊治

猪繁殖与呼吸综合征，又称蓝耳病。是由猪繁殖与呼吸综合征病毒引起的一种病毒性传染病，以母猪怀孕后期流产、死产、产弱仔，以及各种年龄段的猪均表现发热、呼吸道症状为特征的疾病。本病可给养猪业造成极大的经济损失．现将一起运输引起的病例介绍如下。

猪圆环病毒Ⅱ型与猪繁殖呼吸障碍综合征混合感染的诊断

猪圆环病毒属圆环病毒科,圆环病毒属,是一种直径17 nm的小型,无囊膜的单股负链环状DNA病毒,分为两种不同的基因型(PCV-Ⅰ和PCV-Ⅱ)[1]。PCV-Ⅱ感染所致的临床症状主要有5种[2],即猪断奶后多系统衰弱综合征(PMWS)、猪肾病与皮炎综合征(DNS)、猪呼吸疾病综合征(PRDC)、猪繁殖障碍(PRF)和传染性先天性震颤(CT)。PCV-Ⅱ是断奶多系统消耗综合征(PMWS)的主要病因,其特征是进行性消瘦,呼吸障碍,肾病综合征和先天性震颤[3]。此外,由于PCV-Ⅱ是免疫抑制病毒,因此患病猪更容易受到其他病毒和细菌的侵害。

猪繁殖呼吸障碍综合征与猪传染性胸膜肺炎混合感染的诊治报告

福鼎市华龙公司松阳猪场，位于贯岭松洋山上，系自繁自养场，2004年4月该场从浙江引进100多头后备母猪，进场后第三天有2头突然死亡，一周后该场仔猪和母猪亦发病。症状以体温升高，呼吸困难，食欲不振，两耳发青，肺肿大，肺和肾均有出血，妊娠母猪流产、死胎、木乃伊为特征的传染性疾病。历经60余天，仔猪发病420头，死亡325头；母猪流产24头、公猪发病2头。据流行病学、临床症状及实验室检查诊断为猪繁殖呼吸障碍综合征（Parts）与猪传染性胸膜肺炎（APP）混合感染，现报告如下：

猪繁殖呼吸障碍综合征的诊治

猪繁殖呼吸障碍综合征（PRRS）又称猪蓝耳病，是由莱利斯塔德病毒引起的猪的一种高度接触性传染病，本病的传播速度快，发病面广。本病大小猪都可感染，但妊娠母猪和1月龄仔猪较为常见。病猪和带毒猪从鼻液、粪和粘液中排毒，经呼吸道、生殖道和胎盘传染，

猪繁殖呼吸障碍综合征与副猪嗜血杆菌病混合感染的诊治

近年来9猪场疫病越来越复杂，猪病常以病毒性与细菌性疫病混合感染的形式出现，疫病防控更加困难，给养猪业造成巨大经济损失。现将一例猪繁殖呼吸障碍综合征（PRRS）与副猪嗜血杆菌病混合感染的诊治情况报道如下。

猪繁殖与呼吸障碍综合征的防治措施

猪繁殖与呼吸障碍综合征是一种广泛流行的猪繁殖和呼吸道疾病,于20世纪80年代末首次出现。由于一开始无法确定其病因,这种疾病被赋予了多个名称,包括猪神秘病、蓝耳病、猪不孕和呼吸综合征、SMEDI样综合征和猪繁殖衰竭综合征等。直到1991年,在荷兰成功分离出该病的病原体,命名为Lelystad病毒。

浅谈猪繁殖与呼吸障碍综合征的防治

从猪繁殖与呼吸障碍综合征(PRRS)的发展历史、病原学、临床症状、诊断方法、防治措施、案例分析等方面入手,探究该病的防治方法,旨在提高猪养殖户对猪繁殖与呼吸障碍综合征的认识和防范意识,为有效控制和消除该病提供参考。

猪繁殖与呼吸综合征病毒入侵宿主细胞途径研究进展

病毒入侵宿主细胞是其完成自身复制周期的首要步骤。全面解析病毒入侵宿主细胞途径可深入揭示病毒感染及其致病机制,有助于制定更为有效的抗病毒策略。猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)是具有囊膜的单股正链RNA病毒,对全球养猪业造成巨大的经济损失。以往研究报道PRRSV主要通过网格蛋白介导的内吞途径(CME)入侵宿主细胞。近年来研究发现,除CME外,PRRSV还会采取其他途径入侵宿主细胞。本文通过总结PRRSV入侵宿主细胞途径的最新研究进展,以期加深人们对PRRSV的认识,并为防控该病毒提供新的思路。

一起输入性猪繁殖与呼吸综合征疫情的紧急流行病学调查

自2023年6月4日开始,四川省金堂县某生猪代养场引进的仔猪陆续出现异常死亡情况。为确定病因,分析来源,评估传播风险,赴现场开展了紧急流行病学调查。该猪场于2023年5月20—30日分4批共引进仔猪2200头,截至7月14日,共有222头仔猪发病,124头死亡,袭击率为10.09%,病死率为55.86%。经现场临床诊断、病死猪病理剖检、实验室检测及干预治疗效果印证,综合判定病因为猪繁殖与呼吸综合征病毒感染。经追踪调查,该发病猪场无生猪调出,与该猪场有流行病学关联的其他猪场未出现类似发病情况,因此判定疫情扩散风险较低。溯源调查发现发病仔猪的来源种猪场曾发生过猪繁殖与呼吸综合征疫情,现场调查发现该发病猪场生产管理规范,且周边养殖场未出现猪只异常死亡情况,因此综合判定疫情由引进带毒仔猪引起。本起疫情警示,养殖场在引种前应先确认种源场的疾病流行情况,同时加强引种检疫,尽可能避免输入性疫情发生。

陕西省与河南省猪场猪繁殖障碍与呼吸综合征流行病学调查与序列分析

猪繁殖与呼吸综合征(Porcine reproductive and respiratory syndrome,PRRS)是影响全球养猪业的主要疾病之一。猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)的突变率是RNA病毒中最高的。为了解其分子特征和遗传变异,对陕西和河南地区猪场采集的252份疑似样本采用RT-PCR检测技术和生物信息学软件进行了ORF5基因和Nsp2基因序列比对和遗传变异分析。结果显示:252份样本中阳性样品为39份,阳性率为15.6%。对39份阳性样品克隆测序获得10条Nsp2基因阳性样品序列和5条ORF5基因阳性品序列;5株PRRSV ORF5基因毒株与GenBank中26株PRRSV参考毒株的ORF5基因之间的核苷酸序列同源性为79.7%~99.7%,10株PRRSV毒株Nsp2基因的核苷酸序列同源性为38.2%~92.2%,其中5株ORF5基因的GP5-5、GP5-7、GP5-10毒株为PRRSV-2型谱系1的毒株,99L、100L毒株为PRRSV-2型谱系5的毒株,分别与代表株NADC30和VR-2332亲缘关系最近;10株PRRSV毒株Nsp2基因均为PRRSV-2型谱系1的毒株,与代表株NADC30亲缘关系最接近。GP5蛋白与NSP蛋白均发生不同程度的变异,说明PRRSV毒株变异频繁,因此,实时监测PRRSV株系的遗传变异动态,探索其遗传变异模式,可为疫病防控提供科学参考。

猪繁殖与呼吸综合征毒株的鉴定与分析

猪繁殖与呼吸综合征(Porcine reproducductiveandrespiratory syndrome,PRRS)是引起成年猪出现繁殖障碍、产死胎和木乃伊胎、早产、流产,仔猪发生呼吸系统疾病和大量死亡的一种高度传染性疾病,传播范围广、速度快。该病病原为猪繁殖与呼吸综合征病毒(Porcine reproducductiveandrespiratory syndrome virus,PRRSV)。

猪繁殖与呼吸综合征病毒的持续感染和传播特点及防控出路

1PRRS简述。1987年,美国首次暴发猪繁殖与呼吸综合征(PRRS),随后在世界各国陆续暴发该病,截至目前PRRS已遍布世界主要的养猪业国家,成为各国养猪业最为严重的疫病之一,每年给全球养猪业造成数十亿甚至上百亿美元的经济损失。

非洲猪瘟病毒、高致病性猪繁殖与呼吸综合征病毒二重实时荧光定量PCR检测方法的建立与初步应用

建立一种特异、敏感、快速的实时荧光定量PCR(FQ-PCR)方法,用于非洲猪瘟病毒(ASFV)和高致病性猪繁殖与呼吸综合征病毒(HP-PRRSV)的鉴别诊断。针对ASFV的B646L基因和HP-PRRSV的NSP2基因分别设计特异性引物/探针对,经优化反应体系、反应程序等反应条件,建立一种基于探针技术的FQ-PCR方法,验证方法的敏感性、特异性和重复性,对130份临床样品进行检测,并与OIE检测方法(ASFV)及国标方法(HP-PRRSV)进行比较分析。本研究成功建立的ASFV和HP-PRRSV二重FQ-PCR检测方法在10^(-1)~10^(5) copies/μL模板范围内有良好的线性关系;对ASFV和HP-PRRSV基因出现阳性扩增,但对猪日本乙型脑炎病毒(JEV)、猪瘟(CSFV)、猪细小病毒(PPV)、猪伪狂犬病病毒(PRV)、猪圆环病毒2型(PCV2)、猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)美洲经典株(VR2332株)、健康猪脾脏等7种病原核酸样品对照未出现扩增;批内、批间试验变异系数在0.53%~3.14%,重复性良好;对ASFV和HP-PRRSV的最低检测模板浓度均为10 copies/μL;利用建立的二重FQ-PCR方法对130份临床样品进行检测,检测结果与OIE检测方法(ASFV)及国标方法(HP-PRRSV)完全一致。本研究成功建立了鉴别ASFV和HPPRRSV二重FQ-PCR检测方法,为ASFV和HP-PRRSV的鉴别诊断提供了快速、敏感、特异且能满足临床检测需求的检测方法。

猪繁殖与呼吸综合征病毒GP5蛋白纳米抗体的筛选及其对病毒复制的抑制效应

为获得猪繁殖与呼吸综合征病毒(porcine reproductive and respiratory syndrome virus,PRRSV)GP5蛋白的特异性纳米抗体,并探究其对病毒复制的抑制效应。使用原核表达系统将PRRSV-GP5蛋白大量表达后经镍柱亲和层析法纯化,使用所获的重组GP5蛋白免疫羊驼,并于第0、14、28、42天时采血,检测羊驼体内抗体效价后分离全血淋巴细胞,提取细胞总RNA,反转录后使用巢式PCR扩增出重链抗体可变区(VHH)片段,并与pCANTAB-5E载体相连后转化入TG1感受态细胞,利用噬菌体展示技术构建GP5-VHH噬菌体抗体展示文库。经连续三轮特异性噬菌体的筛选与富集后,淘选出与PRRSV-GP5蛋白高结合力的纳米抗体,通过间接ELISA方法鉴定其反应原性,后将所获的纳米抗体基因克隆至真核表达载体pcDNA3.1(-)中,利用Lipofectamine3000转染至Marc^(-1)45细胞内,与PRRSV分别共孵育0、24、36、48、60、72 h,以探究所筛针对PRRSV-GP5蛋白的纳米抗体于胞内对病毒复制与转录产生的影响。结果表明,成功对PRRSV-GP5蛋白进行原核表达并纯化,得到浓度为2.16 mg·mL^(-1)的重组蛋白,对羊驼三次免疫14 d后,其体内抗体效价高达1∶819200,构建GP5-VHH噬菌体抗体展示文库,库容量达2.93×107 CFU·mL^(-1),插入率为98%。经对噬菌体抗体文库连续三轮淘选富集后,最终获得2株不同氨基酸序列的纳米抗体。间接ELISA结果显示,2株纳米抗体均与PRRSV-GP5蛋白具有良好的亲和力。将2株纳米抗体转染至Marc^(-1)45细胞内,它们分别于36与60 h时显著阻碍PRRSV的复制与转录,展现出了较好的阻碍病毒复制的能力。本研究首次筛选出针对PRRSV-GP5蛋白的特异性纳米抗体,且经验证所筛纳米抗体具备抑制PRRSV在细胞内复制的能力,研究结果为抗PRRSV新型药物的研发奠定了试验依据与物质基础。

猪繁殖与呼吸综合征病毒2型TaqMan MGB探针荧光定量PCR方法的建立

为了准确、特异、高效地检测猪繁殖与呼吸综合征病毒2型(PRRSV2),本研究根据GenBank上登录的PRRSV2不同谱系流行毒株的ORF6基因序列,选取保守区域设计合成了1对特异性检测引物和1条MGB探针,经优化退火温度、引物和探针比例等反应条件及敏感性、特异性、重复性试验,建立了检测PRRSV2的TaqMan MGB荧光定量PCR方法。结果:以猪繁殖与呼吸综合征病毒1型(PRRSV1)、伪狂犬病病毒(PRV)、猪瘟病毒(CSFV)、猪圆环病毒2型(PCV2)、猪圆环病毒3型(PCV3)、猪流行性腹泻病毒(PEDV)及猪细小病毒(PPV)等阳性核酸为模板,均无扩增;对标准质粒的最低检测下限为1×10^(1)copies/μL,建立的标准曲线呈现良好的线性关系,相关系数R2为0.994;稳定性和重复性好,批内和批间变异系数均小于1.78%。应用该方法对保留的30份临床阳性样品进行检测,结果阳性100%,Ct值在22~36间。综上,本研究建立的TaqMan MGB荧光定量PCR方法可用于临床和实验室中PRRSV2的快速检测,为猪繁殖与呼吸综合征的防控提供了技术支持。

不同猪繁殖与呼吸综合征疫苗组合体液免疫效果评估

为了比较不同猪繁殖与呼吸综合征(PRRS)疫苗不同免疫程序对体液免疫效果的影响,本试验选择新引进猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)抗原和抗体均为阴性后备母猪的3个猪场,将各场内猪只按体重分为3个阶段:7~20、20~35和35~50 kg,各场分别从中选取20头猪,共180头猪。每场选用1种免疫方案,第1组混合疫苗组,为首次免疫PRRS弱毒疫苗(CH-1R株),28 d后加强免疫PRRS灭活疫苗(CH-1a株);第2组弱毒疫苗组,为2次均免疫PRRS弱毒疫苗;第3组灭活疫苗组,为2次均免疫PRRS灭活疫苗。疫苗首次免疫后14、28、42和56 d采集猪血清,进行特异性PRRSV ELISA(N蛋白)检测和中和抗体评价;首次免疫后14和28 d采集猪血液,进行PRRSV实时荧光定量PCR(RT-qPCR)检测血液内是否存在PRRSV;统计试验猪分娩后头胎的活仔数、断奶仔猪数和窝均总仔数,进行临床数据比较分析。结果显示,35~50 kg体重阶段猪只接种疫苗后ELISA检测抗体水平增高较其他2个阶段更明显。混合疫苗组在免疫56 d时血清ELISA阳性率为100%,且ELISA结果极显著高于弱毒疫苗组和灭活疫苗组(P<0.01)。尽管各组没有产生特异性抗NADC30-like毒株的中和抗体,但针对PRRSV经典和高致病性毒株的中和抗体保护效价结果显示,混合疫苗组在免疫56 d时中和抗体效价极显著高于弱毒疫苗组和灭活疫苗组(P<0.01);RT-qPCR检测未发现阳性猪;各组试验猪分娩后头胎的活仔数、断奶仔猪数和窝均总仔数之间差异不显著(P>0.05)。结果表明,混合疫苗组对体液免疫的促进效果显著优于弱毒疫苗组和灭活疫苗组。该试验为临床正确选择PRRS疫苗免疫方案提供了科学数据。