猫杯状病毒高致病性毒株特性研究进展

猫致死性全身系统性疾病(Virulent systemic disease,VSD)由猫杯状病毒高致病性毒株(Virulent systemic feline calicivirus,VS⁃FCV)引起。患猫感染后表现为全身性症状,累及多个器官组织,引起高致死率。由于尚未发现VS⁃FCV相应的临床和遗传标志物,且疫苗免疫效果有限,给猫杯状病毒的防治带来了新的挑战。本文通过综述VS⁃FCV引起的流行病学特征、临床特点、病原学特性和生物学特性方面的研究进展,对该毒株的判定方法进行讨论,以期为其临床诊断和相应疫苗的研发提供理论依据。

猫杯状病毒CH-JL2分离株对猫的致病性研究

为研究猫杯状病毒(FCV)CH-JL2分离株对猫的致病性,本研究采用滴鼻方式分别以10^(8.97)TCID_(50)/mL、10^(7.97)TCID_(50)/mL与10^(6.97)TCID_(50)/mL的病毒液(0.5mL/只)感染6~11周龄健康未免疫中华田园猫,通过对临床症状、体温、排毒情况、组织病理变化以及组织中病毒分布情况的观察与监测,评价其致病性。结果显示,不同滴度的FCV CH-JL2分离株感染猫均可发病,发病率依次为100%、50%与25%,FCV感染5d后,感染猫开始排毒,出现体温升高、鼻眼分泌物增多、口腔溃疡等典型临床症状,但在感染猫的肺脏、心脏、脾脏、气管等全身组织脏器中均未检测到FCV的分布。结果表明CH-JL2分离株不同于FCV VSD株,感染猫后仅可引起上呼吸道感染,不能造成全身感染。本研究为FCV的防制奠定了基础。

一例疑似高致病性猫杯状病毒感染病例的诊治

对一例有四肢水肿破溃、打喷嚏等症状的猫进行了X光、血常规、血生化以及杯状病毒PCR等实验室检查,并结合患猫的临床症状进行分析,初步诊断为疑似高致病性猫杯状病毒感染。经过一个月左右的对症和支持治疗后,患猫康复出院。本文总结本病例的诊治过程,旨在为临床兽医提供一定参考。

一例猪繁殖与呼吸综合征高致病性毒株与链球菌混合感染的实验室诊断

某规模化自繁自养猪场产房母猪出现流产,保育猪关节肿胀、倒地不起、大量死亡,为研究发病原因,采集流产胎儿、死亡仔猪的肺脏、脾脏、淋巴结和关节液,进行分子生物学检测,病毒和细菌分离鉴定,并检测不同胎龄母猪猪繁殖与呼吸综合征病毒抗体,结果显示猪繁殖与呼吸综合征病毒检测为阳性,使用PAM分离到一株猪繁殖与呼吸综合征病毒,经序列鉴定为高致病性毒株;抗体结果表明四胎及以上母猪猪繁殖与呼吸综合征病毒抗体阳性率异常升高;病料分离的细菌经鉴定为猪链球菌,经实验室诊断确定猪场发病的原因为猪繁殖与呼吸综合征高致病性毒株与猪链球菌混合感染。

高致病性猪繁殖与呼吸综合征病毒HuN4株及其致弱过程中的不同代次病毒的分子特征分析

为了追踪高致病性猪繁殖与呼吸综合征病毒(Highly pathogenic porcine reproductive and respiratory syn-drome virus,HP-PRRSV)毒力逐渐减弱的分子轨迹,我们以HP-PRRSV亲本毒HuN4株及其系列传代致弱毒株为研究对象,对HuN4株及其不同代次毒株其全基因序列进行了序列比较分析。结果显示由高致病性的亲本毒HuN4株到无致病性的F112代的疫苗毒,共有65个核苷酸发生突变,其中导致41个氨基酸发生突变,这些突变的氨基酸分散性的存在于不同基因区域。与已经报道的高致病性JXA1株及其致弱毒株JXA80株相比较,可以看到两个强毒株毒力致弱的演变轨迹并不完全相同,二者之间不仅氨基酸突变数量不一致,而且突变氨基酸的位置也不完全相同,但其共同特点是由强毒株到弱毒株的变化过程中,突变率较高的结构蛋白相一致,突变率较高的非结构蛋白基本一致。分析结果提示我们决定高HP-PRRSV毒力强弱的因素可能不是由单个氨基酸的突变来决定的,推测是由一个基因或多个基因或多种因素共同造成的,同时也使我们认识到PRRSV的非结构蛋白区在病毒毒力变化中可能发挥重要作用。

高致病性猪蓝耳病病毒湖北分离株细胞培养特性研究

高致病性猪蓝耳病是近年来严重危害我国养猪业的一种传染病.为了探明高致病性猪蓝耳病病毒在Marc145细胞上的增殖特性,本研究在分离获得高致病性猪蓝耳病病毒湖北株的基础上进行了细胞培养特性研究.结果表明:高致病性猪蓝耳病病毒湖北株在Marc145细胞上增殖所需的最佳条件分别为:营养液最佳血清含量为10%;最佳pH值为7.2～7.4;细胞最佳培养密度为105～ 2×105/mL;病毒增殖的最佳接毒量为8×103 TCID50/mL;病毒增殖的最佳吸附时间为37 ℃,60 min;最佳收毒时间为接毒后60～84 h;病毒最佳冻融次数为反复冻融3次.

HuN4-F112株高致病性猪繁殖与呼吸综合征弱毒疫苗免疫后病毒血症和抗体消长规律的试验报告

应用高致病性猪繁殖与呼吸综合征弱毒疫苗（HuN4-F112株）对28—30日龄的仔猪进行免疫，并定期采样检测，研究免疫后病毒血症持续时间和抗体消长规律，结果表明，病毒血症在免疫后第1周即可出现，最长可持续至免疫后第6周；疫苗免疫后，母源抗体明显下降，免疫后第3周平均阻断率最低为18％，此后开始上升，至免疫后第7周平均阻断率达到最高值85％，随后开始缓慢下降，至免疫后第16周时为54％。研究表明，HuN4-F112株高致病性猪繁殖与呼吸综合征疫苗免疫后病毒血症持续时间最长为6周，抗体水平在免疫后第7周时达到最高。

PRRSV高致病性毒株和经典毒株SYBR GreenⅠ实时荧光PCR鉴别方法的建立

根据猪生殖与呼吸综合征病毒高致病性毒株、经典毒株Nsp2基因序列的差异,应用Oligo软件设计了2对特异引物,建立了鉴别PRRSV高致病性毒株和经典毒株的SYBR GreenⅠ实时荧光PCR方法。用该方法检测JEV、CSFV、FMDV和PRCV均呈阴性,表明该方法特异性良好;敏感性试验结果表明,该方法的最低检出量为1 TCID50/0.1 mL;批内、批间重复性试验显示,其变异系数均低于0.3%,具有良好的重复性。应用该方法对人工感染动物进行检测,自感染后第3、5、7、10、142、1 d分别采集全血,检测结果均为阳性。证实,本试验所建立的SYBR GreenⅠ实时荧光PCR方法具有良好的特异性、敏感性和重复性,可以快速、准确地鉴别PRRSV高致病性毒株和经典毒株。

高致病性猪繁殖与呼吸综合征GD强弱毒株感染对猪外周血淋巴细胞亚群的影响

为了从细胞水平探讨PRRSV GD强毒株和PRRSV弱毒疫苗接种仔猪后对其外周血淋巴细胞亚群的影响,运用血常规技术和流式细胞技术分析了猪体外周血淋巴细胞亚群的动态变化。将30日龄20头SPF猪分成3组,分别感染HP-PRRSV GD第5代强毒株、GDr180弱毒疫苗株及留作对照。于感染后第0、3、7、10、14、21、28及35天采血进行外周血淋巴细胞亚群测定,分析淋巴细胞亚群的变化。结果表明:HP-PRRSV GD强毒株感染可导致白细胞、淋巴细胞数量、单核细胞、粒细胞、B细胞、Tc细胞、Th细胞、Tm细胞、和γδT细胞数量的下降;而弱毒疫苗GDr180株免疫则表现为白细胞、淋巴细胞、单核细胞、引起粒细胞、B细胞、Tc细胞、Th细胞和Tm细胞的上升,对γδT细胞的影响不大;阴性对照组在整个检测期间各种细胞基本上保持稳定状态。从实验结果可以看出:与HP-PRRSV GD强毒株破坏免疫细胞不同,PRRSV弱毒疫苗GDr180株免疫接种能刺激猪免疫细胞增殖,给试验猪提供良好的免疫反应。

禽流感病毒是如何突变为高致病性毒株的

AI病毒似乎拥有无穷的机制使自己从温和型无致病性病原突变为高致病性病原.幸运的是这种突变相对于每年鸡群感染禽流感的总次数来说是很少的.

高致病性猪繁殖与呼吸综合征病毒HuN4株致弱毒株特异性抗原表位的鉴定

通过对高致病性猪繁殖与呼吸综合征病毒HuN4株亲本毒及其不同代次传代毒株Nsp2蛋白氨基酸序列比较分析，发现不同代次的Nsp2蛋白存在4处氨基酸点突变，针对每个突变点分别人工合成编码短肽的核苷酸序列，经原核表达后进行Westernblot分析。

高致病性蓝耳GDr180株弱毒活疫苗及野毒感染对猪瘟兔化弱毒疫苗免疫抗体效果的影响

本文旨在研究猪高致病性蓝耳GDr180株弱毒活疫苗对猪瘟免疫抗体效果的影响,为此,同时进行了高致病性蓝耳GDr180株弱毒活疫苗接种和野毒感染两个影响因素的试验。在试验1中,试验动物采用经聚合酶链式反应(PCR)核酸检测和酶联免疫吸附试验(ELISA)抗体检测确定为猪蓝耳病阴性的仔猪;试验组仔猪分别在14日龄时注射1mL高致病性蓝耳GDr180株弱毒活疫苗和21日龄时注射2头份猪瘟兔化弱毒疫苗,对照组分别在相对应日龄时注射1mL生理盐水和2头份猪瘟兔化弱毒疫苗。在试验2中,试验组动物采用经PCR核酸检测和ELISA抗体检测确定为猪蓝耳病阳性的仔猪,对照组动物采用猪蓝耳病阴性的仔猪;在21日龄时,两组同时注射2头份猪瘟兔化弱毒疫苗;在35日龄时,对试验仔猪进行CSF和PRRS抗体检测。结果表明,高致病性蓝耳GDr180株弱毒活疫苗免疫有效且对猪瘟兔化弱毒疫苗免疫效果无显著影响,而高致病性蓝耳野毒感染对猪瘟兔化弱毒疫苗免疫效果影响显著。

高致病性猪蓝耳病自然病例与美洲株(VR-2332)人工感染猪的比较病理学

为了解猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)美洲株与我国当今流行的高致病性毒株在致病性上的差异,对高致病性PRRSV自然感染病例和美洲株VR-2332人工感染猪进行比较病理学研究,探讨PRRSV高致病性毒株的致病特点及发病机制。结果显示,高致病性PRRSV会引起发病猪耳和四肢末端迅速发绀、皮肤点状出血、急性肺实变、全身出血性坏死性淋巴结炎、急性炎性脾肿、部分病例脾边缘出血性梗死灶、肾点状出血和胃肠黏膜出血等剖检病变,死亡病猪具有急性出血性败血症的剖检病变特征。全身性淋巴组织急性坏死、重度病毒性脑炎、实质器官变性坏死及肺继发感染为高致病性PRRSV自然感染病例的组织病变特征,这是导致病猪急性死亡和多继发感染的的主要原因。两病毒感染猪的肺和扁桃体免疫组化染色阳性细胞以及肺和脾电镜下病毒颗粒的分布、形态基本相同。

2021年全球高致病性禽流感疫情分析

2021年,全球60多个国家报告发生高致病性禽流感疫情,疫情传播范围广、发病禽种类多,给养禽业造成了巨大的危害和损失,特别是流行毒株发生了明显变化,2021年1~5月以H5N8亚型高致病性禽流感为主,此后H5N1亚型疫情逐渐增多而H5N8亚型疫情呈减少趋势,至2021年11月全球高致病性禽流感已形成以H5N1亚型疫情为主、H5N8亚型疫情零星发生的局面。

猪高致病性蓝耳病等病毒的有效防治

去年夏、秋开始，一种新的病毒性传染病——猪无名高热病在各地相继发生（为蓝耳病的变异毒株，经过病毒基因序列分析该变异毒株为缺失30个氨基酸的美洲株蓝耳病毒。），严重威胁着养殖业的安全。该病传播迅速、死亡率高、治愈率低。不同地区发病特点、临床症状、病理变化均有差异。大部分发病猪场发病率在50％以上，死亡率高达50～90％。

首个可鉴别诊断高致病性PRRS野毒和疫苗株（TJM）的标准化一步法RT—PCR试剂盒研制成功

猪繁殖与呼吸综合征（PRRS。俗称蓝耳病）是影响养殖业的首要传染病。为了在猪群中有效地区别接种疫苗和受野毒感染的猪。华威特生物科技有限公司于日前成功开发了“鉴别诊断高致病性PRRS野毒和疫苗株（TJM）RT-PCR一步法试剂盒”。应用本方法能快速确诊蓝耳病野毒感染。为蓝耳病疫情监测、优化防疫方案及蓝耳病毒的净化提供了关键技术手段。

高致病性蓝耳苗又添新毒株“GDr180”

近日，记者从农业部官方网站获悉，由中国兽医药品监察所、广东永顺生物制药股份有限公司和北京信得威特科技有限公司，共同研发的高致病性猪繁殖与呼吸综合征活疫苗（GDr180株），已获得农业部颁发的三类新兽药注册证书。据悉，GDr180株蓝耳苗为冻干疫苗，10头份、20头份、50头份三种不同的包装，5月底产品投向市场。

高致病性蓝耳(JiangXi-1R株)疫苗不同免疫模式对猪瘟疫苗首次免疫的影响

为了探明高致病性蓝耳(JiangXi-1R株)弱毒疫苗免疫是否对猪瘟弱毒疫苗首免产生干扰作用,同时优化猪场现行免疫程序,本试验选取94头仔猪,分为A、B、C、D四组,A组仅在30日龄以2头份/头免疫猪瘟疫苗;B组在30日龄同时免疫猪瘟(2头份/头)和猪蓝耳疫苗(0.5头份/头);C、D组分别在15日龄以0.5头份/头和0.3头份/头免疫猪蓝耳疫苗,30日龄以2头份/头免疫猪瘟疫苗。结果表明,同时免疫高致病性蓝耳(JiangXi-1R株)弱毒苗和猪瘟兔化弱毒疫苗以及两者间隔15d免疫与不进行蓝耳免疫相比,对猪瘟首免抗体的产生没有明显的干扰作用;间隔15d以0.3头份或0.5头份免疫高致病性蓝耳(JiangXi-1R株)弱毒苗,对猪瘟首免抗体水平也没有明显影响。

玉林市重组禽流感病毒三价灭活疫苗的免疫效果探究

高致病性禽流感属于一类动物疫病,也是人畜共患病,其病毒毒株为H5和H7血清亚型。高致病性禽流感自2021年在欧美及亚洲国家肆虐以来,对我国乃至世界养禽业都造成了巨大损失,其中危害最严重的是H5N8亚型禽流感[1]。为降低H5N8亚型禽流感对我国家禽的危害,农业农村部经过多重评估和临床试验,对禽流感H5+H7亚型三价灭活疫苗毒株进行了调整,并于2022年将新疫苗投入使用。

高致病性蓝耳病变异株有效防控措施

什么是高热病？ 农业部的诊断结论：本病的发生主要是蓝耳病变异毒株为主、发病后一般混合或继发多种病毒、细菌性疾病。