羊口疮疫苗对兔体液免疫和细胞免疫的影响

为深入研究羊口疮疫苗诱导机体产生免疫效应的分子机理,用羊口疮疫苗免疫兔,并对其血清中的特异性抗体水平和外周血免疫相关细胞因子的表达水平进行研究。将500 m L灭活的羊口疮病毒感染细胞毒液和经超声波破碎的灭活羊口疮病毒感染细胞毒液分别浓缩至100 m L,按照佐剂说明书比例,分别与弗氏佐剂、201VG、1313VG、GEL01、11R VG混匀。另外,取灭活的羊口疮痂皮毒液10 m L与201 VG混匀,制备成疫苗。用所制备的不同佐剂疫苗各免疫2只兔子。在免疫后不同时间采集外周血,应用琼脂免疫扩散方法检测血清中特异性抗体效价,同时应用实时荧光定量PCR方法检测外周血中细胞因子表达水平。结果显示:在兔子接种羊口疮疫苗后期,血清中抗体效价除了"1313VG+未破碎病毒"组为1:8之外,其他组别的抗体效价均达到1:16或1:32;各组别外周血中Th1型细胞因子(IL-2、IFN-γ、TNF-α)的表达量与对照组相比总体上升,而Th2型细胞因子(IL-4、IL-6)的表达量总体呈下降趋势。结果表明,羊口疮疫苗可以同时诱导机体产生细胞免疫应答和体液免疫应答,但对该两种免疫应答的诱导水平不同。

羊常用疫苗使用和驱虫方法体会

羊养殖产业是天祝县的主导产业,在该县经济发展中占有重要地位。相关部门需加快羊产业的发展,促进农牧民增收,确保市场供给。羊疫病是阻碍羊养殖产业发展的重要问题,做好相关疫病防控制至关重要。基于此,本文主要探究了羊常用疫苗使用和驱虫方法,以供参考。

羊高效双羔疫苗对藏绵羊繁殖率和羔羊成活率的影响

为了研究羊高效双羔疫苗对藏绵羊繁殖率和羔羊成活率的影响,在同一栋羊舍内,将300只经产母羊随机分为对照组和试验组,每组150只。对照组和试验组母羊饲养水平为:燕麦青干草自由采食,每天补饲由拉萨新希望实业股份有限公司提供的怀孕母羊补饲颗粒料0.6 kg。试验母羊与公羊分开饲养后第3日颈部皮下注射羊高效双羔疫苗1 mL。3周后,每日上午8:30-9:00公羊拴系试情布进入母羊群进行诱导发情,寻找发情母羊。给发情母羊颈部皮下注射羊高效双羔疫苗1 mL后再进行人工输精。3周后,对返情母羊颈部皮下注射羊高效双羔疫苗1 mL后再进行人工输精。5个月后记录产羔情况和羔羊成活情况。结果表明,对照组母羊产羔138只、繁殖率为92%,试验组经产母羊产羔222只、繁殖率为148%,两组对比差异极有统计学意义(p<0.01);对照组羔羊成活130只、繁活率为94.20%,试验组羔羊成活217只、繁活率为97.75%,两组对比羔羊繁活率差异有统计学意义(p<0.05)。故羊高效双羔疫苗可有效提高藏绵羊经产母羊的繁殖率,在全舍饲不影响羔羊的繁活率。

羊传染性脓疱皮炎耐热性活疫苗冻干曲线的筛选试验研究

采用冷冻干燥技术,设置了三条不同的冻干曲线,以培养的羊传染性脓疱皮炎(Orf)弱毒为对象,通过冻型、色泽、质地、水分含量、真空度、冻干时间长短、冻干前后病毒损失量为参数,筛选适合羊Orf耐热性活疫苗的最佳冻干曲线,生产出符合质量要求的冻干疫苗。试验结果显示:利用不同曲线冻干的羊Orf耐热性活疫苗,体积几乎没有发生变化,颜色一致,疏松多孔,呈海绵状,加水后溶解迅速而完全,且立即恢复原来的状态;在耐老化试验中疫苗均表现出了很好的耐热保护性能,虽然在冻干前后病毒损失量略有不同,但差异不明显。因此,通过冻型好、冻干前后病毒损失量较小、冻干时间短,最终确定冻干曲线1为羊Orf耐热性活疫苗的最佳冻干曲线。

羊传染性脓疱皮炎活疫苗临床免疫效果观察

羊传染性脓疱是严重危害羔羊健康的一种接触性传染病,能够造成巨大的经济损失。本试验用羊传染性脓疱皮炎活疫苗,对482只10~30日龄健康状况良好的南疆绒山羊开展羔羊免疫试验。结果表明:未进行免疫的羔羊羊传染性脓疱发病率为68.5%,而使用羊传染性脓疱皮炎活疫苗免疫羔羊的羊传染性脓疱的发病率为零,免疫效果显著,能大幅度减少农牧民的经济损失。试验组羔羊的断奶体重显著高于对照组羔羊(P<0.01)。结论:使用羊传染性脓疱皮炎活疫苗能有效预防羊传染性脓疱的发生,能减少农牧民的经济损失,具有较高的推广价值。

高效双羔疫苗对全舍饲同期发情经产多玛绵羊产羔率和羔羊成活率的影响

为研究高效双羔疫苗对全舍饲同期发情多玛绵羊产羔率和羔羊成活率的影响,在同一种羊场,将420只经产母羊随机均分为对照Ⅰ组、对照Ⅱ组、试验AⅠ组、试验AⅡ组、试验BⅠ组和试验BⅡ组,70只/组。对照Ⅰ组、试验AⅠ组和试验BⅠ组饲养方式为燕麦青干草自由采食+每天补饲怀孕母羊补饲颗粒料0.6 kg;对照Ⅱ组、试验AⅡ组和试验BⅡ组饲养方式为燕麦青干草自由采食+每天补饲怀孕母羊补饲颗粒料0.8 kg。分别于第1日和第21日对试验AⅠ组、试验AⅡ组、试验BⅠ组和试验BⅡ组的母羊进行颈部皮下注射双羔疫苗1 mL,于第2次免疫后再间隔2周后,于每日上午8∶30—9∶00公羊拴系试情布进入母羊群进行诱导发情,寻找发情母羊,对接受试情公羊爬跨的母羊进行人工输精。其中试验AⅡ组和BⅡ组所有母羊于第2次免疫的第2日,阴道内放置海绵栓,放栓后第12天上午注射PMSG和PG,放栓后第13天下午撤拴,撤栓后第2天早上,将试情公羊放入母羊群中,寻找发情母羊。5个月后记录产羔情况和羔羊成活情况。结果表明,在相同的饲养管理下,对照Ⅰ组和对照Ⅱ组未做高效双羔疫苗免疫,AⅡ组和BⅡ组在同期发情的基础上经高效双羔疫苗免疫,几组经产母羊的产羔数量具有统计学意义(p<0.01),且母羊繁殖率也具有统计学意义(p<0.01);同样,试验AⅠ组和试验BⅠ组经高效双羔疫苗免疫,并且试验AⅡ组和BⅡ组在同期发情的基础上经高效双羔疫苗免疫,几组经产母羊的产羔数量具有统计学意义(p<0.01),且母羊繁殖率也具有统计学意义(p<0.01)。燕麦青干草自由采食、每天补饲怀孕母羊补饲颗粒料0.6 kg和0.8 kg差异的基础上,对照Ⅰ组和对照Ⅱ组、试验AⅠ组和试验AⅡ组、试验BⅠ组和试验BⅡ组母羊的产羔数量具有统计学意义(p<0.01),且母羊繁殖率也具有统计学意义(p<0.01)。不论是在相同的饲养管理下,还是燕麦青干草自由采食、每天补饲怀孕母羊补饲颗粒料0.6 kg和0.8 kg差异的基础上,各组经产母羊所产羔羊成活率差异不具有统计学意义。结合补饲和同期发情技术,高效双羔疫苗可有效提高藏绵羊经产母羊的繁殖率,且不影响羔羊的成活率。

改进羊大肠杆菌病灭活疫苗效力检验方法的试验总结

羊大肠杆菌病灭活疫苗又可称羊大肠埃希氏菌病灭活疫苗。本品是用免疫原性良好的大肠埃希氏菌 ,接种于适宜的培养基内培养 ,将培养物经甲醛溶液灭活后加氢氧化铝胶制成的 ,主要用于预防羊大肠埃希氏菌病 ,免疫期为 5个月。我厂羊大肠杆菌病灭活疫苗的效力检验 ,长期以来一直采用传统、较落后的本动物试验方法 ,不但成本高 ,检验程序复杂 ,而且与内地先进的检验技术有较大的差距 ,严重影响和制约着本疫苗检验技术的发展、进步。通过引进“豚鼠代替本动物 (羊 )进行效力检验羊大肠杆菌病灭活疫苗”的检验技术 ,不仅使检验方法更加科学、成本也能下降 68%。

提高羊梭菌三联干粉灭活疫苗质量的探索

[摘要] 用产出率作为衡量羊梭菌三联干粉疫苗的主要质量指标,通过试验证实影响单位出粉量与免疫量的因素有:高压条件、培养基质量、最佳灭活时间等,并对这些因素进行了适度的调整与配置。

羊链球菌病灭活疫苗试制小结

根据《伯吉氏细菌鉴定手册》第八版分类第十四部分，将革兰氏阳性球菌分为微球菌、链球菌及消化球菌三科，其中链球菌属又根据抗原结构特性，分为群特异性抗原，型特异性抗原，核蛋白抗原三类，兽疫链球菌是其中之一，而我国又分离得到了一株兽疫链球菌的绵羊变种，命名为(Streptococcus Zooepidemicus Var.ovis）。现在我国制造羊链球疫苗所用菌株为该株培育的弱毒株F60株，用于制造羊链球菌病弱毒活疫苗或用该株培育的强毒株制造羊链球菌病灭活疫苗。该菌形态特征为革兰氏阳性，溶血，呈双球或短链（4－6个菌相连），很少单个存在，液体培养物中呈长链状，陈旧培养物中形成大小不一、不规则圆形、无运动性不形成芽胞和荚膜，兼性厌氧。在葡萄糖、胱氨酸鲜血琼脂斜面上培养10－20h呈灰色、半透明、湿润、粘稠菌苔，在血液琼脂上10－12h培养，为无色透明，露滴状菌落，有β型溶血环。在马丁肉汤中24h培养，呈中等浑浊，无菌膜，少量絮状沉淀，放置一周后上部澄清，在厌气肉汤和普通肉汤中生长不良，缓冲内汤中24h培养呈一致浑浊，不形成菌膜。

羊四苗分点同时免疫与单苗免疫对比试验

为探索不同组合的免疫方法对其抗体产生的影响,确立合理有效的免疫程序。试验将口蹄疫、羊三联四防、小反刍兽疫和羊痘4种疫苗进行不同组合,即分别进行单苗单独、两两组合、三三组合、4种疫苗同时分点注射,共分为15组,每组20只,对各组免疫后副反应观察和抗体水平检测。结果表明:口蹄疫、三联四防、小反刍兽疫和羊痘4种疫苗分点同时注射组产生的抗体水平,与单苗注射组相比,差异不显著(P﹥0.05),疫苗注射后产生的抗体效价相对较高且稳定,不同疫苗产生的抗体之间相互干扰、拮抗作用不明显,抗体合格率分别在70%以上,均能达到国家规定的免疫要求,因此该免疫接种方法在实际工作中可推广应用。

羊三联四防培养基制备要点的初步分析

羊三联干粉疫苗在培养基制备上,进行原料选择、工艺制造、pH值的调整、原料浸泡等方面进行改进后,生产的羊三联干粉疫苗,经检验各项生产指标完全符合2000年版《兽用生物制品规程》的要求。

羊腐蹄病的防治

羊腐蹄病是一种侵害羊指、趾间皮肤表皮和蹄基质的慢性坏死性疾病。本文介绍了羊腐蹄病的发病原因、临床症状、诊断方法和防治措施。预防本病需要加强饲养管理和尽早接种疫苗。对于患病羊只,可使用外部处理和非肠道途径给药进行治疗。