耳蜗支持细胞的生物学特性

本文通过对近年来有关耳蜗支持细胞（主要是Ｈｅｎｓｅｎ细胞，Ｄｅｉｔｅｒｓ’细胞）的研究文献的复习，对Ｈｅｎｓｅｎ细胞，Ｄｅｉｔｅｒｓ’细胞多方面的生物学特性作一综述。

Neuritin耳蜗支持细胞条件性敲除转基因小鼠模型的构建及鉴定

目的应用Cre-LoxP重组酶系统构建Neuritin耳蜗支持细胞特异性敲除的Sox2-CreER:Neuritin^(flox/flox)转基因小鼠模型,初步探讨敲除Neuritin对小鼠耳蜗听功能的影响。方法采用Cre-LoxP重组酶系统,将Neuritin^(flox/flox)小鼠和Sox2-CreER工具鼠进行饲养和繁殖,对其子鼠提取尾组织DNA,采用PCR方法鉴定小鼠基因型,获取基因型Sox2-CreER:Neuritin^(flox/flox)即为耳蜗支持细胞条件性敲除Neuritin的转基因小鼠。对其进行听功能检测,选择听力正常的Sox2-CreER:Neuritin^(flox/flox)小鼠作为实验小鼠,连续3 d腹腔注射tamoxifen诱导CreER发挥作用后,分别于诱导后第4和7天,检测Neuritin敲除小鼠的听力变化,并通过组织免疫荧光检测其耳蜗支持细胞中Neuritin的表达量,进一步验证Sox2-CreER:Neuritin^(flox/flox)小鼠模型的构建效果。结果成功构建耳蜗支持细胞条件性敲除Neuritin基因小鼠模型,该小鼠存活且有繁殖能力。听功能测试结果显示在耳蜗支持细胞内特异性敲除Neuritin基因的小鼠听力阈值与对照组相比明显上升(P<0.05),但都处于正常听力范围内。耳蜗细胞组织形态与野生型相似,免疫荧光结果显示Sox2-CreER:Neuritin^(flox/flox)小鼠耳蜗内Neuritin的表达量明显低于对照组。结论应用Cre-LoxP重组酶系统成功构建了耳蜗支持细胞中条件性敲除Neuritin基因的Sox2-CreER:Neuritin^(flox/flox)转基因小鼠模型,为在动物水平研究Neuritin在听力损失的可能恢复机制中的作用提供一定的研究平台基础。

耳蜗毛细胞相关细胞及影响因子的发育研究进展

听觉感知细胞即毛细胞，因其顶端被毛状的纤毛所覆盖而得名。人耳在出生时大约包含15000个毛细胞，随着年龄的增长数目逐渐减少。近年来，毛细胞是否再生的问题受到了国内外广大研究者越来越多的关注。Cruz等发现新生小鸡的耳蜗毛细胞在受损伤后有再生的能力，并被以后的许多实验证实。Forge等利用在体实验结合电镜研究，首先在豚鼠前庭系统观察到毛细胞再生，使毛细胞再生问题得到了突破性进展。本文通过对耳蜗毛细胞、耳蜗支持细胞及其影响因子进行综述，以进一步探讨耳蜗毛细胞的再生问题。