枇杷茎尖组培苗的遗传稳定性及生产性能

本实验证明,枇杷组培苗与同品种嫁接苗以及原母株相比,组培7—15代苗,无论在树姿、树形、叶片和花期、花形、果实各形态指标,色泽、风味、品质以及种子特征等各植物学性状上均没有发生变异。其过氧化物酶同工酶等生物化学特性也没有差别。组培苗营养生长整齐一致,个体间差异小,第2—5年生长量平均比嫁接苗快30％,根系也较发达;栽植第2年第1次成花比嫁接苗少62.4％,第3、4、5年花量及结果量比嫁接苗分别高62—175％,51—197％。说明其不受砧木、接穗来源以及嫁接口愈合状况不同的影响,而具有良好的生产性能。

影响甘蔗茎尖组培苗假植成活质量的几个因素分析

将假植成活率和成活植株的形态特征结合起来,作为评价指标,摸索分析了不同消毒处理、不同苗床基质、不同浓度NAA(萘乙酸)蘸根处理对甘蔗茎尖组培苗假植成活质量的影响。试验表明:两种不同消毒处理方式对甘蔗组培苗假植成活率的影响较小,但对成活植株质量的影响较大;不同苗床基质对甘蔗茎尖组培苗假植成活质量有一定影响;不同浓度NAA蘸根处理对甘蔗茎尖组培苗假植成活质量影响较大,成活植株的根长、株高、叶长、叶宽等性状,随着NAA浓度的变化,呈现出一定的规律性。

葡萄茎尖组培苗中扇叶病毒的酶联(ELISA)检测

目前使用的扇叶病毒(GFLV)检测方法包括:接种昆诺藜与千日红、嫁接接种砂地葡萄(Vitis rupestris Scheele)的St.George 品种、免疫双扩散,抗体致敏乳胶试验、免疫电镜及酶联免疫吸附试验(ELISA)。(ELISA)方法由于无需特殊设备,从而得到最广泛应用。在植株体内,GFLV 的含量随季节而变化。在某些时期,含量很低,即使用ELISA,也无法测出其中的 GFLV。

红豆越橘组培苗茎尖小滴玻璃化超低温保存

研究了红豆越橘组培苗茎尖的小滴玻璃化超低温保存方法。剪取苗龄30 d的组培苗带顶芽茎段,在WPM(Woody plant medium)+0.5 mg/L ZT(Zeatin玉米素)+30 g/L蔗糖+7 g/L琼脂培养基(SSM)上,于4℃黑暗条件下炼苗25 d;将剥取的长约2.0 mm茎尖在黑暗和(25±2)℃条件下用预培养基(WPM+0.3 mol/L蔗糖+7 g/L琼脂)培养24 h;室温下茎尖在加载液(WPM+2.0 mol/L甘油+1.0 mol/L蔗糖)中处理30 min;0℃下用植物玻璃化溶液Ⅱ(PVS2)处理茎尖40 min;0℃下在铝箔条上将茎尖与PVS2制成小滴(2.5μL),并迅速投入液氮(-196℃)中保存1 h;从液氮中取出带茎尖的铝箔条迅速转入卸载液(WPM+1.2 mol/L蔗糖)中,室温下解冻和卸载20 min;将卸载的茎尖在SSM培养基上黑暗培养(25±2)℃1 d;之后在正常光照条件下再生培养。结果表明:再生培养30 d后,试验的4份种质资源的平均再生率为76%,这为红豆越橘种质资源保存提供了一种新的途径。

越橘离体茎尖包埋玻璃化超低温保存

为越橘种质资源保存提供新途径,试验研究了越橘组培苗茎尖包埋玻璃化法超低温保存方法。结果显示适宜的条件包括:剥取顶芽茎尖(长1.0~1.5 mm),在(25±2)℃黑暗条件下预培养1 d;使用移液枪吸取茎尖与藻酸盐溶液,滴入氯化钙溶液中形成包埋球(直径4 mm);包埋球在加载液中加载1.5 h(室温);包埋球转入PVS2溶液处理4 h(0℃);将装有包埋球的冷冻管投入液氮保存1 h;取出液氮中的冷冻管迅速转入37℃水浴锅中解冻1~2 min,在室温下取出包埋球,在卸载液中卸载20 min;卸载的茎尖在再生培养基上(25±2)℃黑暗培养5 d;之后在正常光照条件下培养30 d。所测试的8个越橘基因型平均再生率为57.9%,最高再生率为78.5%,最低为41.7%。