生产中酵母凝聚性下降的原因及解决办法

酵母凝聚是指酵母细胞从介质中由悬浮状态凝集成团并快速地沉降的现象.酵母凝聚的机理很复杂,它受到诸多因素如Ca++、Zn++、糖、pH、温度、表面电荷、培养条件等的影响.酵母凝聚时间、强度会影响发酵过程,进而影响啤酒的成份和风味.在啤酒生产过程中,有时会出现这样的情况,即:某段时期内,大多数发酵罐内的酵母凝聚性能突然下降,0℃贮酒期发酵液中的酵母数偏高,造成啤酒过滤困难.本文针对产生这一问题的原因进行分析,并结合生产实践提出了相应的解决办法.不妥之处,敬请指正.

甘露二糖分子构型对鸡源致病性大肠杆菌凝聚酵母细胞的影响

本研究首先通过D-甘露糖解聚试验确定所选取的大肠杆菌为含有Ⅰ型菌毛的甘露糖敏感型菌株,并利用显微镜观察初步比较α-甘露二糖和β-甘露二糖解除大肠杆菌凝聚酵母细胞活性的差异。随后采用分光光度计浊度计算法测定大肠杆菌和酵母细胞的最佳凝聚条件以及α-甘露二糖和β-甘露二糖的解聚活性。结果显示:所选取的鸡源致病性大肠杆菌为甘露糖敏感型菌株,其对酵母细胞的粘附能力能够被D-甘露糖所抑制;α-甘露二糖、β-甘露二糖对大肠杆菌凝聚酵母细胞均具有解聚活性。其中α-甘露二糖能更有效地解除鸡源致病性大肠杆菌对酵母细胞凝聚作用。

用连续培养法筛选强凝聚性酵母的研究

本文以BH＃酵母为出发菌株，此菌株形态较好，降糖较快。但发酵时双乙酰较高，凝聚性低，凝聚值为32．5％，影响到发酵和啤酒质量。在保持原菌株良好性能的条件下，用连续培养法筛选凝聚性酵母。

应用絮凝基因表达量分析技术评价酵母菌株的絮凝性

为筛选弱絮凝性酵母菌株YJ085,通过糖抑制实验确定酵母絮凝表型和絮凝基因型,以荧光定量PCR为技术手段,建立酵母基因表达量分析方法,对弱絮凝性酵母菌株生长过程进行转录水平的基因表达量变化评价。在下面酵母发酵过程中,絮凝基因的表达量与酵母增殖数量呈负相关。弱絮凝性酵母菌株YJ085的絮凝表型为New FLO型,通过对不同时间点的发酵液取样,提取酵母RNA,分析得出YJ085与对照菌株在生长过程中絮凝基因的表达量变化,絮凝主要受FLO絮凝基因家族中的FLO5及Lg-FLO1基因调控,FLO1、FLO11表达量在发酵过程始终维持在较低表达量,FLO10基因不表达,经絮凝基因表达量分析发现,YJ085各絮凝基因表达量均小于对照菌株,絮凝基因表达量的变化导致其凝聚性降低了63.98%,从基因层面阐述了菌株凝聚性弱的原因。