响应面-主成分分析法优化副干酪乳杆菌发酵培养基

为提高副干酪乳杆菌发酵液中的乳酸菌数、γ-氨基丁酸(GABA)产量和乳酸产量,本试验采用单因素法、响应面法和主成分分析法对其发酵培养基成分进行了筛选和优化。结果表明:副干酪乳杆菌发酵培养基的最佳配方为:葡萄糖30 g/L,酵母粉50 g/L,L-谷氨酸钠15 g/L,硫酸锰0.18 g/L,乙酸钠5 g/L,磷酸氢二钾2 g/L,柠檬酸氢二铵2 g/L,吐温-801 mL/L。该条件下,副干酪乳杆菌发酵液中的乳酸菌数为5.34×10^(9) CFU/mL,GABA产量为576μg/mL,乳酸产量为12.32 mg/mL,得到的规范化综合得分为0.9016,与理论规范化综合得分0.9247接近,表明响应面结合主成分分析法对副干酪乳杆菌发酵培养基的优化具有良好的效果。

鼠李糖乳杆菌培养基成分的快速筛选(英文)

本实验利用单因素试验和Plackett-Burman试验快速筛选鼠李糖乳杆菌(L.rhamnosusMEE539)的培养基成分。首先,采用单因素试验分别从碳源和氮源中筛选出影响显著的成分,然后将这些成分连同表面活性剂和矿物质进行Plackett-Burman试验。结果表明,在27种被测成分中葡萄糖、糖蜜、酵母粉、玉米浆、土温80和硫酸锰对鼠李糖乳杆菌发酵的影响最显著,置信度均大于95%。单因素试验和Plackett-Burman试验相结合可以降低试验劳动强度,减少培养基配制的差错,有助于不同种类培养基成分的快速筛选。

鼠李糖乳杆菌发酵生产L-乳酸培养基的优化

对鼠李糖乳杆菌发酵生产L-乳酸的发酵培养基组成进行了研究;通过正交实验得到最佳氮源组合为酵母粉5g/L,蛋白胨10g/L,牛肉膏15g/L;生长因子实验表明,番茄汁和白菜汁的添加量各为10%时,L-乳酸的产量最高;葡萄糖、吐温80、生长因子和氮源的四因素正交实验表明,最佳培养基组成为葡萄糖160g/L,酵母粉5g/L,蛋白胨10g/L,牛肉膏15g/L,吐温801mL/L,番茄汁50mL/L,白菜汁50mL/L。用该培养基发酵所得L-乳酸的产量高达143.6g/L,得率为89.8%。

响应面法优化鼠李糖乳杆菌TUST006培养基的研究

筛选并优化了鼠李糖乳杆菌TUST006发酵培养基。通过响应面分析方法确定培养基的主要影响因素和最佳浓度。利用Design Expert软件进行分析,确定对响应值影响显著的三个因素为乳糖、胰蛋白胨、牛肉膏。得到各因素的最佳水平值为乳糖3.17%、胰蛋白胨4.22%、牛肉膏2.08%,活菌数达到2.94×1010cfu/mL。通过此方法优化出的发酵培养基可为今后Lactobacillus rhamnosus TUST006的培养和开发利用提供必要的理论基础。

基因组改组鼠李糖乳杆菌生产L-乳酸发酵培养基的优化

通过单因素试验确定了耐酸性强、高产L-乳酸的改组菌株Lc-F34的发酵最适碳源为葡萄糖、初始葡萄糖浓度为90～110g/L,淀粉葡萄糖水解物可以作为乳酸发酵的碳源;最适氮源为酵母抽提物,玉米浆次之,玉米浆可以部分或全部代替酵母抽提物作为乳酸发酵的氮源;适量的MgSO4和MnSO4对该菌株的发酵有刺激作用,MgSO4最适浓度为0.3%,MnSO4最适浓度为0.05%。

短乳杆菌LB-02培养条件及培养基成分优化研究

研究通过单因子优化试验和正交试验对短乳杆菌培养条件和培养基成分进行初步的优化。结果表明:短乳杆菌属于兼性厌氧菌,最佳培养条件是:温度35℃、培养时间24h,pH5.5,接种量为1%;优化培养基成分:蛋白胨12g,酵母提取物5g,牛肉膏12g,葡萄糖16g,乙酸钠5g,柠檬酸铵2.15g,Tween801mL,MgSO4·7H2O0.58g,MnSO4·4H2O0.05g,K2HPO42g,水1000mL。优化培养后OD值达到1.839,活菌数能达到728亿CFU/mL。

嗜酸乳杆菌-1.557培养条件及培养基成分优化研究

嗜酸乳杆菌（Lactobacillus acidophilus）属于乳杆菌属，是肠道重要的益生菌，对维持胃肠道的生理功能有重要作用，被广泛用于发酵食品与医药行业。但在饲料生产和养殖业中应用报道较少，为了探讨嗜酸乳杆菌在畜牧业生产上的标准化应用，本研究以产酸能力较强的嗜酸乳杆菌-1．557菌株为试验菌，优化了其培养条件和培养基成分，给乳酸菌发酵饲料的标准化生产提供依据。

鼠李糖乳杆菌LT22发酵培养基优化

[目的]提高发酵液中鼠李糖乳杆菌LT22的菌体浓度。[方法]采用Plackett-Burman设计对培养基中相关影响因素的效应进行评价,筛选出3个重要因素依次为葡萄糖、酵母膏和吐温80;然后进行最陡爬坡试验逼近最佳响应面区域;最后通过Box-Behnken设计及响应面分析法确定最佳培养基配方。[结果]鼠李糖乳杆菌LT22的最佳培养基配方为:葡萄糖17 g、蛋白胨12 g、牛肉浸膏10 g、酵母膏4.8 g、乙酸钠3 g,柠檬酸氢二铵2 g、MnSO4.H2O 0.1 g、MgSO4.7H2O 0.6 g、吐温80 0.6 ml、蒸馏水1 000 ml。用优化培养培养鼠李糖乳杆菌,其发酵液的菌体含量是MRS培养的6.7倍。[结论]结果为鼠李糖乳杆菌动物微生态制剂的研制奠定了基础。

响应面法优化植物乳杆菌发酵产胆盐水解酶的培养基成分

以胆盐水解酶的活性为响应值,采用响应面设计分析法对植物乳杆菌发酵产胆盐水解酶培养基的成分进行优化。获得最佳培养基组成(g/L):葡萄糖19.40、蛋白胨17.05、大豆蛋白胨14.00、乙酸钠1.82、K2HPO42.00、酵母浸粉6.00、柠檬酸氢二铵1.00、Mg-SO40.87、MnSO40.45、L-半胱氨酸0.5、吐温-80 2.2mL/L。在该优化条件下,胆盐水解酶产量为(7.02±0.28)U/mL,较单因素优化前提高了6.44倍。所得数学模型的预测值与实验观察值相符,能够预测不同培养条件下植物乳杆菌发酵产胆盐水解酶产量的变化。

鼠李糖乳杆菌LR-ZB1107-01的培养基优化及益生特性评价

对课题组前期分离得到的对模拟胃肠道耐受良好的鼠李糖乳杆菌LR-ZB1107-01(Lactobacillus rhamnosus ZB1107-01)的培养基进行优化,初步研究了其益生特性,以提高单位体积发酵液中的菌体数量,为此菌株的开发和应用提供基础。首先,测定LRZB1107-01菌株在MRS培养基中的生长曲线,明确其在液体培养基中的生长规律;其次,以LR-ZB1107-01菌株发酵液中的活菌数为检测指标,对不同种类的氮源、碳源及生长因子进行单因素考察,以确定最适培养基组分,并进行响应面试验来优化培养基配比,以筛选最优发酵培养基;最后,对LR-ZB1107-01的硝基还原酶活性、氨基脱羧酶活性等体外安全性进行评价。结果表明,在2%葡萄糖含量的MRS培养基基础上,改变3种显著影响活菌数的营养成分及含量,即添加0.02%D-异抗坏血酸、0.12%硫酸镁、3%蛋白胨,再结合优化后的培养条件,活菌数可达8.56×10^(8)CFU/mL,较在MRS培养基中提高了约10.7倍。体外安全性评价结果表明,LR-ZB1107-01对硝基还原酶和氨基酸脱羧酶均呈阴性,说明该菌株具有一定的安全性。文中研究成果对LR-ZB1107-01菌株微生态制剂的工业化生产和后续产品开发具有一定的指导作用。

鼠李糖乳杆菌LP216高密度发酵培养基优化

为提高鼠李糖乳酸杆菌LP216生产效益,通过单因素试验、Plackett-Burman(PB)试验和Box-Behnken(BB)试验,对菌株LP216发酵培养基进行优化。结果表明,最佳培养基配方为酵母提取物16 g/L、蛋白胨13 g/L、葡萄糖30 g/L、牛肉膏5 g/L、CH_(3)COONa 4 g/L、吐温801.5 g/L、MgSO_(4)·7H_(2)O 0.25 g/L、柠檬酸二胺2.0 g/L、K_(2)HPO_(4)2.0 g/L、MnSO_(4)0.2 g/L。在此优化条件下,菌株LP216活菌数达8.9×10^(9)CFU/mL,是对照组(MRS培养基)活菌数(3.28×10^(9)CFU/mL)的2.71倍。

耐酒精高产L-乳酸菌株的筛选及发酵培养基优化

为提高L-乳酸产量,降低L-乳酸的生产成本,该研究经过筛选、驯化获得一株耐酒精且高产L-乳酸的菌株鼠李糖乳杆菌AK-0779。使用玉米酒糟代替部分酵母粉作为菌株AK-0779发酵培养基的氮源。在单因素实验基础上,对葡萄糖添加量、酵母粉添加量和玉米酒糟添加量进行三因素三水平响应面优化试验。结果表明,最适发酵培养基为:葡萄糖添加量9.80%,玉米酒糟添加量0.98%,酵母粉添加量1.72%,L-乳酸产量为78.91 g/L,糖酸转换率为80.52%。与酵母粉完全充当氮源产L-乳酸82.36 g/L相比,产量无显著差异,说明玉米酒糟能有效代替部分酵母粉作为发酵培养基的氮源,降低L-乳酸生产成本。

鼠李糖乳杆菌抗胁迫菌株的筛选及培养条件优化

以新疆传统酸奶中分离出的八株鼠李糖乳杆菌(Lactobacillus rhamnosus)为出发菌株,对其产酸能力较强菌株的抗氧、抗酸、抗低温胁迫能力进行检测,优选出胁迫抗性能力强的菌株L.rhamnous LGG-QF-3。在单因素试验的基础上,通过正交试验对菌株L.rhamnous LGG-QF-3的培养基生成和培养条件进行优化,得到最佳培养基配方为:3%豆粕、1%酵母粉、10%红糖无机盐,培养条件为37℃,60 r/min振动培养48 h。

罗伊氏乳杆菌LT018高密度培养生长因素的研究

罗伊氏乳杆菌LT018是经过筛选的源自巴马百岁老人粪便中的优良益生菌株。为优化出适合其高密度生长的培养基,本研究以TPY为基础培养基,采用单因素方法确定增值培养基的成分为胰蛋白胨、酵母粉、麦芽糖、柠檬酸、柠檬酸钠、西红柿汁和L-半胱氨酸。采用Plackett-Burman实验设计方法得出胰蛋白胨、柠檬酸和L-半胱氨酸对菌株LT018的生长影响显著,继而进行最陡爬坡实验,通过RSM确定显著因子的最优组合为:胰蛋白胨含量12.13 g/L,柠檬酸0.4 g/L,L-半胱氨酸0.6 g/L。在上述培养基的基础上,利用单因素方法确定培养最佳条件为:接种量为4%,温度为37℃,初始p H为7.0,静置培养。此时该菌株的活菌数可达到7.13×1010cfu/m L,是未优化前的10.7倍。

干酪乳杆菌LC-03的培养条件优化研究

本研究通过单因子优化试验和正交试验对干酪乳杆菌LC-03培养条件和培养基成分进行初步优化。结果表明,干酪乳杆菌LC-03属于兼性厌氧菌,最佳培养基成分为:蛋白胨12g,酵母提取物6g,牛肉膏6g,葡萄糖18g,乙酸钠5g,柠檬酸铵2.15g,Tween801mL,MgSO4.7H2O0.58g,MnSO4.4H2O0.05g,K2HPO42g,水1000mL;最佳培养条件:温度为35℃,培养基起始pH为6.5,接种量为1.0%,培养时间为24h;优化培养后D610nm值达到1.832,活菌数达到3.22×1010CFU/mL。

乳糖乳杆菌的培养条件优化研究

研究通过单因子优化和正交试验对乳糖乳杆菌培养条件进行初步的优化。结果表明,乳糖乳杆菌属于厌氧菌,在改良MRS培养基中培养最佳条件是:温度为35℃,培养时间为48 h,初始p H为9.0,接种量为2.0%;乳糖乳杆菌最适合生长培养基成分为蛋白胨8 g,酵母提取物6 g,牛肉膏8 g,葡萄糖16 g,乙酸钠5 g,柠檬酸铵2.15 g,Tween 80 1 m L,七水硫酸镁(Mg SO4·7H2O)0.58 g,四水硫酸锰(Mn SO4·4H2O)0.05 g,磷酸氢二钾(K2HPO4)2 g,琼脂粉17 g,水1 000 m L。此时OD值能达到1.638,活菌数能达到1.88×109 cfu/m L。

均匀设计法对L-乳酸发酵培养基的优化

以玉米粉为碳源,添加一定量的豆粕粉和玉米浆干粉进行鼠李糖乳杆菌L-乳酸发酵,利用均匀设计法对培养基进行优化。结果表明当玉米粉、豆粕粉、玉米浆干粉的浓度分别为150 g/L、19.4 g/L、50 g/L时,发酵所得L-乳酸的浓度达到最大值142.1 g/L,乳酸转化率为92.5%。

鼠李糖乳杆菌发酵南瓜汁过程中挥发性物质的变化

为了比较不同发酵时间对鼠李糖乳杆菌发酵南瓜汁中挥发性成分的化学组成的影响,采用顶空固相微萃取结合气相色谱-质谱联用技术对发酵南瓜汁的挥发性成分进行分析鉴定。结果表明发酵时间不同,发酵南瓜汁中挥发性物质在种类和含量上均存在差异,其中,发酵12 h时共鉴定出52种挥发性成分,含量较高的挥发性物质主要是3-羟基-2-丁酮(16.06%)、2,4-二叔丁基苯酚(8.05%)、乙醇(6.84%);发酵24 h时共鉴定出41种挥发性成分,含量较高的挥发性物质主要是2,3-丁二酮(20.46%)、3-羟基-2-丁酮(10.8%)、乙酸(9.97%);发酵36 h时共鉴定出40种挥发性成分,含量较高的挥发性物质主要是乙酸(13.98%)、2,3-丁二酮(12.35%)、3-羟基-2-丁酮(10.26%),发酵48 h时共鉴定出37种挥发性成分,含量较高的挥发性物质主要是乙酸(21.48%)、3-羟基-2-丁酮(14.2%)、2,3-丁二酮(12.3%)。

碳源对鼠李糖乳杆菌生长特性的影响

目的研究不同鼠李糖乳杆菌菌株对不同碳源的利用及生长特性。方法在600nm波长处测定12株鼠李糖乳杆菌在不同碳源条件下的吸光度,幵采用差异分析法和分类主成分分析法对其迚行分析。结果利用特定时间点的差异分析,在葡萄糖作为主要碳源时,各菌株之间的生长情况均没有显著差异(P>0.05)。12株菌在乳糖作为主要碳源时可以分为4个生长型,在蔗糖作为主要碳源时可以分为5个生长型。主成分分类法在葡萄糖作为主要碳源时,能将12株菌分为7个生长型,在乳糖作为主要碳源时可分为8个生长型,在蔗糖作为主要碳源时可分为10个类型。结论不同鼠李糖乳杆菌菌株对不同碳源的利用存在差异,表明菌株在碳源利用上具有菌株特异性,同时不同菌株利用碳源的特异性会受到碳源种类的影响。

不同发酵时间鼠李糖乳杆菌LR-D发酵乳对鸡蛋清起泡性能的影响

一、材料与实验方法1材料与主要试剂。实验原料及溶液配制。雀巢脱脂乳粉购于双城雀巢有限公司;鲜鸡蛋购于广州正丰超市。菌种:华南理工大学食品科学与工程学院实验室保存的鼠李糖乳杆菌LR-D。MRS固体培养基配料购于广东环凯微生物科技有限公司,按比例充分溶解于1OOOmL蒸馏水中,调节pH为6.2,于121℃条件下灭菌20min。