人C5a受体与麦芽糖结合蛋白融合基因在大肠杆菌中的表达

为获得高质量及充足的Ｃ５ａＲ，采用ＰＣＲ技术调整了Ｃ５ａＲ基因的开放阅读框架使之与麦芽糖结合蛋白（ＭＢＰ）的基因ＭａｌＥ阅读框架一致，缺失了Ｃ５ａＲｃＤＮＡ基因的起始密码子并增加了一个大肠杆菌偏性的终止密码，构建了Ｃ５ａＲｃＤＮＡ和ＭａｌＥ融合的原核表达质粒Ｃ５ａＲ－ｐＭＡＬ－ｐ２。将重组质粒转入大肠杆菌ＤＨ５α，经０．４ｍｍｏｌＩＰＴＧ在２０°Ｃ条件下诱导１８ｈ，ＳＤＳ－ＰＡＧＥ及Ｗｅｓｔｅｒｎ－Ｂｌｏｔ检测Ｃ５ａＲ－ＭＢＰ融合蛋白在大肠杆菌得以表达，表达量为细菌总蛋白量的３．２％，表达的Ｃ５ａＲ具有抗体结合活性。Ｃ５ａＲ融合蛋白的表达成功将解决Ｃ５ａＲ膜蛋白不易提取的难题。

重组大肠杆菌表达BAFF及其受体的优化研究

构建游离态BAFF及其受体突变体的表达载体,采用大肠杆菌系统进行表达,并优化温度、诱导物浓度对蛋白表达的影响。分别提取K562细胞系mRNA和小鼠脾脏组织mRNA,进行逆转录,后经PCR扩增,获取BAFF和BAFF受体的基因片段,采用单因素实验,选取不同温度及诱导物浓度梯度诱导表达,探索重组蛋白表达的最适条件,提高目标蛋白表达量及可溶性蛋白含量。结果表明BAFF受体突变体在37℃,1 mmol/L IPTG诱导条件下表达量可达到25%左右,且可溶性蛋白含量均高于60%;可溶性BAFF的最适诱导条件为28℃,1 mmol/L IPTG,表明温度可显著提高其可溶性蛋白的含量。BAFF及其受体突变体的克隆和表达,为BAFF及其受体生物学功能的深入研究奠定了坚实的基础。