目的探讨CRIF1基因对L615白血病细胞小鼠体内增殖的影响。方法实验分为3组,CRIF1-RNAi L615实验组(n=3):慢病毒干扰载体抑制L615细胞CRIF1-GFP基因表达;空载体对照组(n=3):空载体转染L615细胞;空白对照组(L615细胞空白对照)(n=3);建立...目的探讨CRIF1基因对L615白血病细胞小鼠体内增殖的影响。方法实验分为3组,CRIF1-RNAi L615实验组(n=3):慢病毒干扰载体抑制L615细胞CRIF1-GFP基因表达;空载体对照组(n=3):空载体转染L615细胞;空白对照组(L615细胞空白对照)(n=3);建立白血病小鼠模型。通过肝脾印片、骨髓涂片及外周血流式细胞仪检测观察各组小鼠体内L615细胞增殖情况,比较各组小鼠的外周血白细胞计数(WBC)、生活质量和生存时间、肝脾指数。结果流式细胞仪检测:CRIF1-RNAi L615实验组、空载体对照组的小鼠外周血均见大量GFP阳性L615细胞;肝、脾印片及骨髓涂片结果显示肝、脾、骨髓均被白血病细胞浸润,3组小鼠均成瘤。CRIF1-RNAi L615实验组、空载体对照组及L615对照组小鼠在白血病细胞植入d5后外周血WBC(×109/L)分别为:42.23±15.08 vs 17.10±4.10 vs 17.30±5.05(P<0.01);生存时间(d)分别为:6.33±1.15 vs 10.00 vs 8.33±2.89(P<0.01);CRIF1-RNAi L615实验组小鼠脱毛、弓背等并发症出现提前;肝、脾指数分别为:122.31±2.83、35.21±0.45 vs 110.89±13.30、21.54±3.40 vs 89.76±5.56、24.71±2.48(P<0.05)。结论抑制小鼠L615白血病细胞CRIF1基因表达后,明显著促进L615白血病细胞在小鼠体内增殖、浸润并加快移植小鼠发病死亡。展开更多
目的探讨人CRIF1基因对骨髓间充质干细胞(hBMSCs)细胞周期调控机制。方法通过构建慢病毒载体改变CRIF1表达水平,合成发夹shRNA模板寡核苷酸链,构建pGreenPuro-sh-CRIF1干扰载体;PCR扩增CRIF1基因CDS全长,链接pMD18-T载体经测序鉴定后,构...目的探讨人CRIF1基因对骨髓间充质干细胞(hBMSCs)细胞周期调控机制。方法通过构建慢病毒载体改变CRIF1表达水平,合成发夹shRNA模板寡核苷酸链,构建pGreenPuro-sh-CRIF1干扰载体;PCR扩增CRIF1基因CDS全长,链接pMD18-T载体经测序鉴定后,构建pLentis-CMV-CRIF1-SFFV-GTP过表达载体。载体成功构建后包装慢病毒,并转染hBMSCs,以pLentis-CMV-SFFV-GTP空载体病毒作为对照,定量PCR及Western blot(WB)检测CRIF1基因和蛋白表达,流式细胞仪检测hBMSCs细胞周期分布,并通过免疫荧光观察CRIF1与CDK2细胞共定位。结果成功构建CRIF1 shRNA及过表达慢病毒载体,测定后病毒滴度达到108TU/mL。以MOI=10转染hBMSCs,并以0.8μg/mL嘌呤霉素筛选1周后,感染效率可达到>95%,WB及定量PCR证实,CRIF1基因和蛋白的表达水平,在pGreenPuro-sh-CRIF1载体转染后hBMSCs细胞受到抑制:与对照组比较,mRNA相对表达水平0.42±0.03 vs1.00±0.03(P<0.01),蛋白相对表达水平0.13±0.024 vs 1.00±0.04(P<0.01),而pLentis-CMV-CRIF1-SFFV-GTP载体转染后得到增强:与对照组比较,mRNA相对表达水平5.54±0.53 vs 1.00±0.03(P<0.01),蛋白相对表达水平4.21±0.22 vs 1.00±0.04(P<0.01)。同时,CRIF1基因过表达诱导hBMSCs G0/G1期阻滞(与对照组比较,84.99±2.66 vs 77.28±0.86,P<0.01),抑制CRIF1基因表达促进其进入细胞周期循环:G0/G1期比例与对照组比较,61.60±3.02 vs 77.28±0.86(P<0.01)。激光共聚焦显示,CRIF1与CDK2共定位于胞浆与胞核。结论 CRIF1可能通过与CDK2结合,负性调控hBMSCs细胞周期分布。展开更多
文摘目的探讨CRIF1基因对L615白血病细胞小鼠体内增殖的影响。方法实验分为3组,CRIF1-RNAi L615实验组(n=3):慢病毒干扰载体抑制L615细胞CRIF1-GFP基因表达;空载体对照组(n=3):空载体转染L615细胞;空白对照组(L615细胞空白对照)(n=3);建立白血病小鼠模型。通过肝脾印片、骨髓涂片及外周血流式细胞仪检测观察各组小鼠体内L615细胞增殖情况,比较各组小鼠的外周血白细胞计数(WBC)、生活质量和生存时间、肝脾指数。结果流式细胞仪检测:CRIF1-RNAi L615实验组、空载体对照组的小鼠外周血均见大量GFP阳性L615细胞;肝、脾印片及骨髓涂片结果显示肝、脾、骨髓均被白血病细胞浸润,3组小鼠均成瘤。CRIF1-RNAi L615实验组、空载体对照组及L615对照组小鼠在白血病细胞植入d5后外周血WBC(×109/L)分别为:42.23±15.08 vs 17.10±4.10 vs 17.30±5.05(P<0.01);生存时间(d)分别为:6.33±1.15 vs 10.00 vs 8.33±2.89(P<0.01);CRIF1-RNAi L615实验组小鼠脱毛、弓背等并发症出现提前;肝、脾指数分别为:122.31±2.83、35.21±0.45 vs 110.89±13.30、21.54±3.40 vs 89.76±5.56、24.71±2.48(P<0.05)。结论抑制小鼠L615白血病细胞CRIF1基因表达后,明显著促进L615白血病细胞在小鼠体内增殖、浸润并加快移植小鼠发病死亡。
文摘目的探讨人CRIF1基因对骨髓间充质干细胞(hBMSCs)细胞周期调控机制。方法通过构建慢病毒载体改变CRIF1表达水平,合成发夹shRNA模板寡核苷酸链,构建pGreenPuro-sh-CRIF1干扰载体;PCR扩增CRIF1基因CDS全长,链接pMD18-T载体经测序鉴定后,构建pLentis-CMV-CRIF1-SFFV-GTP过表达载体。载体成功构建后包装慢病毒,并转染hBMSCs,以pLentis-CMV-SFFV-GTP空载体病毒作为对照,定量PCR及Western blot(WB)检测CRIF1基因和蛋白表达,流式细胞仪检测hBMSCs细胞周期分布,并通过免疫荧光观察CRIF1与CDK2细胞共定位。结果成功构建CRIF1 shRNA及过表达慢病毒载体,测定后病毒滴度达到108TU/mL。以MOI=10转染hBMSCs,并以0.8μg/mL嘌呤霉素筛选1周后,感染效率可达到>95%,WB及定量PCR证实,CRIF1基因和蛋白的表达水平,在pGreenPuro-sh-CRIF1载体转染后hBMSCs细胞受到抑制:与对照组比较,mRNA相对表达水平0.42±0.03 vs1.00±0.03(P<0.01),蛋白相对表达水平0.13±0.024 vs 1.00±0.04(P<0.01),而pLentis-CMV-CRIF1-SFFV-GTP载体转染后得到增强:与对照组比较,mRNA相对表达水平5.54±0.53 vs 1.00±0.03(P<0.01),蛋白相对表达水平4.21±0.22 vs 1.00±0.04(P<0.01)。同时,CRIF1基因过表达诱导hBMSCs G0/G1期阻滞(与对照组比较,84.99±2.66 vs 77.28±0.86,P<0.01),抑制CRIF1基因表达促进其进入细胞周期循环:G0/G1期比例与对照组比较,61.60±3.02 vs 77.28±0.86(P<0.01)。激光共聚焦显示,CRIF1与CDK2共定位于胞浆与胞核。结论 CRIF1可能通过与CDK2结合,负性调控hBMSCs细胞周期分布。