杂交朱顶红鳞茎不定芽诱导研究

[目的]寻求杂交朱顶红鳞茎不定芽诱导的最佳配方,以提高杂交朱顶红组培扩繁系数。[方法]以杂交朱顶红鳞茎为外植体,探讨不定芽诱导的最佳部位、最佳激素浓度,并比较不同品种的杂交朱顶红对不定芽产生的影响。[结果]朱顶红鳞茎诱导不定芽最适部位为鳞茎下部,苹果诱导频率为87.12%,杂交后代18号诱导频率为31.55%;不定芽发生最适培养基为MS+TDZ0.5mg/L+NAA0.1mg/L,无论是诱导频率还是每外植体诱导不定芽数均为最高,苹果诱导频率为100.0%,杂交后代18号诱导频率为70.1%;不同品种不定芽分化差异较大,杂交后代比国外引进品种更难诱导不定芽。[结论]为朱顶红的种球国产化提供了强有力的技术支持。

朱顶红节日供花种球处理技术研究

为了解决朱顶红节日供花问题,通过对种球采收时间、处理温度、贮藏方式及条件、栽培管理设施和培养温度等因素的不同组合处理试验,结果表明:朱顶红种球经过各种方式处理后及不同条件培养,春节、"五一"和国庆节促成栽培节日供花是可行的。

朱顶红盆花花期调控技术研究

以引进朱顶红品种‘Lady Jane’、‘Apple Blossom’、‘Red Charm’、‘Red Lion’、‘Hercules’、‘BlossomPeacock’等为材料,对其在不同储藏方法、催花温度、品种和种球规格对开花率的影响进行研究。结果表明：朱顶红进行促成栽培时种球需在4-7℃低温冷藏45-60 d;在22℃下叶芽萌动10-14 d,25℃以上花芽萌动。促成栽培可以选择早、中花品种,抑制栽培适宜选择晚花品种。用于促花的种球直径在8 cm以上可达100%开花。

进口水溶性肥料对朱顶红盆栽苗生长的影响

研究不同浓度的进口水溶性肥料20-10-20和施肥周期对朱顶红(Hippeastrum hybridum)两个品种‘Blossom Peacock’和‘Apple Blossom’盆栽苗生长的影响。结果表明,朱顶红两个品种盆栽苗生长需要肥料浓度有差异,在合理的电导率(EC)范围内,‘Blossom Peacock’在100 mg/kg肥料处理下,生长基质EC最大为1.16 mS/cm,植株苗期叶片增加数最大,在150 mg/kg肥料处理下,EC最大为1.70 mS/cm,植株苗期生长最大叶长增加量最大,在200 mg/kg肥料处理下,球直径增加量最大;‘Apple Blossom’在150mg/kg肥料处理下,生长基质EC最大为1.67 mS/cm,叶片增加数、最大叶长增加量和球直径增加量最大。施肥周期越长,生长基质EC越低,生长旺盛期7 d施肥一次更有利于朱顶红的生长。

‘圣诞快乐’朱顶红花芽分化研究

采用解剖观测和石蜡切片技术,对朱顶红品种‘圣诞快乐’花芽生长情况、花器官分化和性细胞分化过程进行了研究,以明确朱顶红花芽分化特征,为其花发育、花期调控、杂交育种和系统分类研究提供理论依据。结果表明‘:圣诞快乐’朱顶红每年产生2个花序芽,在第2年完成其内花芽花器官分化,经过低温作用后于第3年盛开,其中第2个花序偶有败育发生;花器官分化过程包括花原基分化期、外花被原基分化期、内花被原基分化期、雄蕊原基分化期、心皮原基分化期,对应的花芽大小分别约为0.02、0.05、0.1、0.2、0.3 cm,所有花器官均为螺旋状向心式发生;朱顶红花药4室,花药壁从外至内由表皮、药室内壁、中层和绒毡层组成,绒毡层类型为分泌型,小孢子减数分裂类型为连续型,四分体排列方式为十字交叉型,成熟花粉粒为2-细胞型;朱顶红雌蕊3心皮,下位子房,中轴胎座,3心室,每室两列倒生胚珠,胚珠为双珠被,厚珠心,具葱型胚囊。

朱顶红根·鳞茎·叶发育规律的研究

[目的]通过对朱顶红生长发育规律的研究,提高朱顶红年宵花盆栽的观赏效果,并为朱顶红种球商品化奠定基础。[方法]定期测定朱顶红的根系、鳞茎、叶片,探索朱顶红的生长发育规律。[结果]根据根系、鳞茎、叶片的发育规律,用于年宵花盆栽的朱顶红种球必须在自然花期后及时起挖种球上盆。实施催花措施后,朱顶红在春节前开花并保持植株挺拔不倒伏,具有良好的观赏性。只有在叶片枯萎后50d左右起挖,才能得到完全发育的鳞茎球。[结论]该研究为朱顶红花期促控提供根据。

不同品种朱顶红鳞茎切割扦插繁殖试验

以维加斯、柠檬冰糕、圣诞快乐等15个朱顶红品种的鳞茎为试材,进行不同品种鳞茎切割扦插繁殖特性的比较试验。结果表明,不同品种扦插繁殖能力差异显著。柠檬冰糕子球生成进程最快,插后25d子球开始生成,35d即进入子球生成盛期;诱惑鳞茎扦插成活率最高,为97.2%;双重惊喜种球繁殖系数最高,达38;综合考虑鳞茎扦插成活率与繁殖系数等因素,应选择抗性强和繁殖能力强的品种进行鳞片扦插繁殖更有利于朱顶红规模化种球的生产。

对定结县陈塘镇朱顶红的观赏性评价

对朱顶红11个主要的观赏性状进行分析,结果表明,引进品种A3观赏性最好,单朵花期较短,始花期晚,而2个野生品种B1和B2的观赏性仅次于A3,且花期较长、花朵大、颜色较艳丽,这3个品种A3、B1和B2与理想品种的关联度较大,分别为0.851、0.772、0.746,综合观赏性最好。因此,A3、B1、B2很适合陈塘镇生长,可适当提高种植面积。为了朱顶红观赏性评价更具客观性以及实用性,应从多方位、多角度进行全面系统评价,可对不同观赏性状确定合理的权重。

不同施肥模式对朱顶红幼苗生长指标的影响

以进口朱顶红栽培品种双龙为试验材料,比较花多多水溶性肥料(20-20-20)和芭田高塔复合肥(15-15-15)的不同施肥水平和施肥周期对其盆栽苗生长的影响。结果表明,在试验浓度范围内,合理施肥能显著增加双龙幼苗的叶片数、最长叶长和球直径,有利于诱导根系的发生和生长,对双龙叶片叶绿素含量积累具有积极作用;每14 d喷施1 mg/L芭田复合肥能较大程度节约投入成本;每14 d喷施1.5 mg/L花多多水溶肥能达到最佳施肥效果;进行朱顶红大田生产建议选择每14 d施用1 mg/L芭田复合肥;进行盆栽生产及对朱顶红生长表现要求较高时,建议选择每14 d施用1.5 mg/L花多多水溶肥。

三种生长调节剂对朱顶红幼苗生长的影响

以进口朱顶红栽培品种双龙(Hippeastrum hybridum ‘Double Dragon’)幼苗为试验材料,研究不同浓度的水杨酸、赤霉素、萘乙酸3种生长调节剂对朱顶红幼苗球茎大小、叶片生长、叶绿素含量和根系生长等的影响。结果表明,在不同喷施频率下,合理的喷施生长调节剂(水杨酸和赤霉素)能够显著地促进朱顶红幼苗的叶宽、叶长、球茎等的生长,其中喷施100 mg/L水杨酸6次左右效果最佳。喷施3次水杨酸和赤霉素能显著提高叶绿素含量,其中赤霉素对促进朱顶红叶绿素含量增加最为明显。适宜浓度(50mg/L)的萘乙酸对促进朱顶红的根系数量增加效果最为明显。

朱顶红花器官离体培养诱导再生植株研究

在添加NAA或2,4-D和6-BA的MS基本培养基中,以朱顶红品种"柠檬冰糕"(Hippeastrum hybridum‘lemon sorbet’)的花器官为外植体进行体外培养,分别从子房壁、花瓣、胚珠的培养中诱导出无菌植株,并对再生植株后期的生长表现进行几年的持续观察,认为花器官培养是最有效的朱顶红快速繁殖方式。

朱顶红组培苗小鳞茎切割诱导新植株技术研究

以白肋朱顶红和荷兰进口的双龙朱顶红的组培苗为试验材料,研究了2个品种小鳞茎的再切割诱导率、不同切割方式对繁殖系数的影响以及培养基不同激素配比的筛选。结果表明:双龙和白肋2个朱顶红品种的无菌苗小鳞茎均具有再切割诱导出芽的能力,而其叶片未能诱导出芽,其中白肋品种的诱导率高于双龙的;朱顶红小鳞茎最佳的切割方式为带鳞茎盘的纵向切分,双龙和白肋品种纵向切分的繁殖系数分别是横向切分的11和6.1倍;双龙和白肋2个朱顶红品种的小鳞茎再切割最佳激素浓度配比为MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 1.0 mg/L,繁殖系数分别为1.04和1.26。

朱顶红愈伤组织诱导及增殖发育体系的建立及优化

以朱顶红带有小鳞茎的试管苗作为外植体,进行愈伤组织的诱导、增殖及不定芽分化研究,结果表明:诱导愈伤组织形成的最佳培养基为MS+2,4-D 2.0mg/L+6-BA1.0mg/L+KT2.0mg/L。愈伤组织增殖需要的最佳2,4-D 2.0mg/L浓度为1.0mg/L,促进不定芽分化及植株再生的6-BA浓度为0.5mg/L。

南疆地区朱顶红引种驯化适应性研究

以朱顶红双龙品种为供试材料,设置拌施20%有机土壤改良剂、拌施2%石膏粉2个土壤处理,以南疆地区原生土为对照处理,测定土壤pH、生长指标(株高、株宽等)和繁殖指标(分蘖率、花茎率)。结果表明,土壤改良剂显著降低土壤pH值,施用20%有机土壤改良剂能将原生土从碱性改良为中性。施用有机土壤改良剂能显著提高朱顶红球径、株高、株宽、最长叶片长、最长叶片宽等生长指标,促进朱顶红花茎的产生,有利于提高朱顶红观赏性;对照处理朱顶红各生长指标显著低于其他2个处理,但分蘖率显著高于其他2个处理,说明种植在南疆地区原生土壤中促进了朱顶红无性繁殖。

朱顶红体细胞胚胎发生及植株再生研究

通过诱导朱顶红(Hippeastrum hybridum)小鳞茎形成胚性愈伤组织,建立间接的体细胞胚胎发生途径和植株再生的无性繁殖体系。试验结果表明,0.5mg.L-1的2,4-D附加0.5mg.L-16-BA对试管小鳞茎外植体初代胚性愈伤组织的诱导和继代增殖有明显的促进作用,初培养松脆愈伤组织诱导率可达83.3%。2.5～5.0mg.L-1的6-BA对体细胞胚胎的发育有显著的促进作用,培养50d大于20个体细胞胚发生的愈伤组织约为50%;相同浓度6-BA附加不同浓度NAA的试验组间体细胞胚发育无明显差异。

朱顶红新品种繁殖技术初探

以朱顶红新品种‘苏红’与‘风车’的鳞茎为试材,采用切割繁殖、组培繁殖方法对2种朱顶红新品种进行了繁殖技术的研究,以提高朱顶红繁殖效率,加速朱顶红新品种的推广。结果表明:切割繁殖使这2个品种繁殖率和生长量差异明显,‘苏红’繁殖率和切割5个月后的子球生长量大于‘风车’;组培繁殖采用鳞茎切割后的小子球,2个品种最适的初代消毒方式为75%的酒精30s,0.1%升汞18min,饱和次氯酸钙20min;消毒后的小子球进行4分切割后组培增殖最快,污染率最低。

不同栽培设施对朱顶红生长的影响

以朱顶红新品种"苏红"为试材,采用定期取样测量的方法,研究了塑料大棚、智能温室、塑料大棚+智能温室等3种不同栽培设施(组合)对朱顶红生长的影响,以期探讨朱顶红新品种‘苏红’从组培苗到商品球适宜的生产设施。结果表明:3种设施条件下,种球直径在2年内随时间变化的生长曲线呈单S型;植株叶片面积和株高的变化呈双S型;叶片数量随时间变化的生长曲线呈3个S型。栽培2年后,种球直径、植株叶片面积、叶片数量、株高4个指标均是智能温室栽培的最高,平均种球直径均达到开花种球(种球直径6.00cm以上)要求。塑料大棚和塑料大棚+智能温室的生产设施最后生长量差别不大。平均种球直径均在6.00cm以下。因此智能温室最适合生产"苏红"种球,栽培2年后,种球均能达到开花种球。

朱顶红及孤挺花属植物抗寒性初步研究

以朱顶红品种‘孔雀花’、‘凤蝶’和孤挺花为试材,研究其在不同低温处理条件下的外部形态变化以及相对电导率变化规律,并配合Logistic方程计算出各自的半致死低温,比较这些品种相对抗寒性的强弱。结果表明:朱顶红和孤挺花的叶片相对电导率均随温度降低呈S型上升,而且形态上观察受冻情况与电解质外渗率的变化趋势基本相符。‘孔雀花’的半致死低温为-1.99492℃,抗寒性明显偏低;而‘凤蝶’和孤挺花的抗寒性明显强于‘孔雀花’,孤挺花的半致死低温为-6.17733℃,‘凤蝶’的半致死低温为-7.69215℃,二者半致死温度相接近,属于耐寒力较强的品种。

电导法配合Logistic方程测定朱顶红的抗寒性

朱顶红又名孤挺花、百支莲和喇叭花,为石蒜科、朱顶红属多年生草本球根花卉。其花朵硕大,花色丰富而美丽,既可作室内观赏、又可作庭院栽培,观赏价值和经济价值较高。但朱顶红喜温暖湿润气候,不耐寒冷,抗寒力较差。耐寒性问题是推广朱顶红品种的最大制约因素,而目前朱顶红的抗寒性研究相当薄弱。本文采用人工模拟低温胁迫,研究朱顶红在不同低温处理下电解质外渗率的变化,探讨电导法配合Logistic方程在快速测定朱顶红抗寒性上应用的可行性,以便为进一步研究和鉴定朱顶红的抗寒性提供重要参考依据。试验材料取自苏州农业职业技术学院相城科技园江苏省球根花卉种质资源资源圃,为荷兰引进的朱顶红品种‘孔雀花’（Hippeastrum hybridum‘Blossom peacock’）。试验于2012年3月上旬进行。取2～3年生‘孔雀花’植株上完整、无病虫害的成熟叶片5～10枚,叶片从三个不同植株随机取样混合使用。将叶片取回实验室后用自来水和去离子水彻底冲洗干净后,用洁净的滤纸吸干叶面水分,用湿纱布包裹,于4℃冰箱预冷12h,然后再放入可控温冰柜（内装风扇以利空气循环）进行低温处理,处理温度分别是1℃、-1℃、-3℃、-5℃、-7℃,每一温度下设不同处理时间,即0.5h,1h,2h,3h,6h,12h,24h共7个梯度,冷处理结束移入4℃冰箱中解冻4h。解冻后用直径0.5cm的打孔器避开主脉取叶圆片测定叶片相对电导率。每个处理重复三次。去离子水的添加比例为1：50。叶子经常温去离子水浸泡24h后测常温电导率,然后放入100℃水浴锅煮沸15min,等自然冷却再测煮沸电导率,最后计算相对电导率。相对电导率=（样品常温电导率/样品煮沸电导率）×100%。研究结果表明：不同低温胁迫下,‘孔雀花’叶片的相对电导率,24h以内随着处理时间的延长逐渐增高。处理前期呈快速上升,而后期呈缓慢递增的趋势。在不同处理时间下,随着处理温度的逐渐降低,孔雀花叶片相对电导率逐渐增加。但0.5h和1h处理时间相对电导率变化曲线较平缓,且曲线呈＂直线型＂;而2h以上处理时间里相对电导率变化显著,叶片的相对电导率呈典型的＂S＂型曲线变化。通过2h以上5个不同处理时间分别计算‘孔雀花’的半致死温度（LT50）为-1.71℃和-3.62℃之间,结果重复性较好,各拟合方程均具有较好的拟合结果。因此,说明用电导法配合Logistic方程来快速测定朱顶红的抗寒性具有一定可行性。对于朱顶红‘孔雀花’电导法配合Logistic方程计算其半致死温度的低温处理时间宜采取2～24h。

朱顶红幼嫩花器官离体诱导试管小鳞茎的研究

以荷兰进口大花朱顶红品种"美丽参半"(Half&Half)盆栽植株为材料,对幼嫩的子房和小花梗进行体外培养,建立了高效的植株再生体系。试验于2014年2月份采集刚刚抽薹而花苞尚未打开时的花蕾作为外植体。简化了表面消毒程序:在超净台中将包裹着外苞片的花蕾先用70%乙醇浸泡10min,然后用无菌水清洗3次即可。先去除外苞片,然后在无菌滤纸上用手术刀将小花梗和子房切片,厚度约1 mm,平放于诱导培养基上进行黑暗培养,温度25±1℃。在TDZ(0.25、0.5、1.0或2.0mg·L-1)+2,4-D1.0mg·L-1系列培养基上的比较试验后,结果表明:小花梗不定芽诱导适宜培养基为MS+0.5mg·L-1TDZ+1.0mg·L-12,4-D+30g·L-1蔗糖,p H5.8;子房不定芽诱导适宜培养基为MS+1.0mg·L-1TDZ+1.0mg·L-12,4-D+30g·L-1蔗糖,p H5.8。培养过程中,小花梗和子房的外表面陆续形成突状物,8周后形成不定芽,不定芽诱导率均达100%。为降低生长调节剂对试管鳞茎生根的影响,将带有不定芽的外植体转移至MS+蔗糖30g·L-1+琼脂8.0g·L-1(p H6.0)培养基上培养,温度25±1℃,光照强度54μmol·m-2·s-1,光周期为光照14h/黑暗10h。8周后,每个小花梗外植体平均可形成11.0个小鳞茎,每个子房外植体平均可形成9.3个小鳞茎。利用扫描电镜技术观察小鳞茎淀粉粒分布和形态特征;同时利用组织切片(苏木精和碘-碘化钾复染)对不同层次的小鳞茎淀粉分布及特征进行分析,结果表明:淀粉粒集中分布于鳞茎外层细胞,内层细胞较少;成熟淀粉粒呈圆球形,直径约25μm,表面较光滑。本研究为朱顶红种球生产提供支持,并为其鳞茎膨大机理(鳞茎和叶片的"库"和"源"功能)研究提供离体模型。