HuR基因的慢病毒干扰载体构建及其病毒包装

目的构建人HuR基因慢病毒干扰载体和基因敲低细胞株,为揭示C/EBPβ3’UTR RNA与HuR蛋白相互作用抑制肝癌细胞增殖的分子机制奠定基础。方法根据shRNA设计原则设计人HuR基因的shRNA序列,用化学合成法合成shDNA序列,以LV10(pGLVU6/RFP/Puro)为载体骨架,构建慢病毒干扰载体LV10-HuR,并与慢病毒包装辅助载体(pLP1、pLP2和pLP/VSVG)共转染HEK293T细胞,收集病毒液纯化后感染SMMC-7721细胞并用嘌呤霉素杀死未感染的肝癌细胞,荧光显微镜下挑取单克隆红色荧光细胞集落,扩大培养后通过Western blot验证肝癌细胞内源性HuR蛋白表达。结果经DNA测序鉴定,LV10-HuR正是所需的慢病毒干扰载体。通过共转染获得的重组慢病毒颗粒感染的肝癌细胞在荧光显微镜下显示红色荧光。嘌呤霉素筛选和单克隆细胞集落挑取获得显示红色荧光细胞株,western blot证明稳转细胞内源性HuR基因表达下降,证明LV10-HuR慢病毒干扰载体可以抑制肝癌细胞内源性HuR基因表达。结论成功构建慢病毒干扰载体LV10-HuR,包装出有活性的重组慢病毒颗粒,建立HuR基因敲低肝癌细胞株。

癌基因HuR调节胃癌功能的研究

目的:探讨癌基因HuR在胃癌组织的表达和对胃癌MGC-803细胞功能的影响。方法:使用RT-qPCR分析80例临床确诊的胃癌患者胃癌组织样本中HuR的表达水平;利用pSIH载体构建敲减HuR的重组质粒,实现HuR在MGC-803细胞中的低表达,以空载体pSIH作为对照;使用划痕实验检测细胞迁移能力,使用Transwell实验检测细胞侵袭能力,使用CCK-8法检测细胞活力。结果:RT-qPCR结果显示,与癌旁对照相比,67例(84%)胃癌组织中出现HuR的表达上调;低表达HuR能显著抑制MGC-803细胞的侵袭能力、迁移能力和活力(P<0.05),提示HuR作为癌基因起作用。结论:HuR的异常表达可能与胃癌的发生发展有关,低表达HuR可以抑制胃癌MGC-803细胞的侵袭、迁移和活力。

HuR基因克隆及其在肝癌细胞中的表达

目的:克隆人抗原R基因(HuR)的cDNA,构建重组真核表达载体pEGFP-HuR,并稳定转染肝癌细胞株。方法:应用逆转录聚合酶链反应技术,从肝癌细胞中扩增得到人HuR基因的cDNA序列,克隆至增强型绿色荧光蛋白表达载体中,经Xho I和EcoR I双酶切和DNA测序鉴定后,将重组真核表达载体通过脂质体法导入肝癌细胞中,利用新霉素(G418)筛选出稳定转染pEGFP-HuR的肝癌细胞株,并用Western blot技术检测HuR基因的表达。结果:Xho I和EcoR I双酶切和PCR结果证实真核表达载体pEGFP-HuR构建成功。Western blot结果显示,在稳定转染重组真核表达载体的肝癌细胞中HuR基因表达水平上调。结论:成功构建了真核表达载体pEGFP-HuR,并筛选获得其稳定转染后HuR表达上调的肝癌细胞株,作为进一步研究HuR基因生物学功能的前期工作。

RNA干扰HuR基因表达对急性髓系白血病细胞凋亡和CD7、CD19表达的影响及机制研究

目的:探讨RNA干扰抑制人抗原R(HuR)基因表达对急性髓系白血病细胞(AML)凋亡和CD7、CD19表达的影响及机制。方法:通过Lipofectamine 2000将具有干扰HuR表达的siRNA(HuR-siRNA组)及不具有干扰作用的siRNA(阴性对照组)转染AML细胞株THP-1,未转染的细胞为空白对照组,收集转染48h的细胞,western blotting检测各组细胞中HuR、CD7、CD19、含半胱氨酸的天冬氨酸蛋白水解酶3(caspase-3)、cleaved caspase-3、信号转导与转录因子3(STAT3)、磷酸化的STAT3(p-STAT3)及细胞周期D1(cyclin D1)的蛋白表达,流式细胞仪检测各组细胞的凋亡率。结果:3组caspase-3和STAT3蛋白表达量比较,差异无统计学意义(P>0.05)。与空白对照组和阴性对照组比较,HuR-siRNA组HuR、CD7、CD19、p-STAT3和cyclin D1的蛋白表达量显著降低,cleaved caspase-3蛋白表达量和细胞凋亡率显著升高(P<0.05),阴性对照组与空白对照组比较,差异无统计学意义(P>0.05)。结论:抑制AML细胞HuR基因表达可诱导细胞凋亡,降低CD7和CD19表达,其机制可能与抑制STAT3信号通路有关。

肝细胞特异性HuR基因敲除小鼠模型的表型研究

目的探讨肝细胞特异性敲除HuR基因对小鼠肝脏功能的影响。方法从美国Jackson实验室引进LoxP标记的人抗原R(human antigen R,HuR)基因小鼠(HuRfl/fl)和Alb-Cre转基因小鼠。杂交后,经数代选育配种,建立肝细胞特异性HuR基因敲除小鼠(HuRLKO)模型。PCR技术鉴别小鼠基因型,蛋白免疫印迹和免疫荧光实验检验小鼠肝脏的HuR表达水平,同时HE染色观察肝脏结构变化。高脂喂养HuRfl/fl/Alb-Cre和HuRfl/fl两组小鼠,观察小鼠体重、肝重和肝体比变化,提取血清检测肝脏损伤和脂肪代谢相关指标。结果 PCR成功检测筛选子代小鼠基因型,包括HuRfl/fl/Alb-Cre和HuRfl/fl小鼠。蛋白免疫印迹实验和免疫荧光实验证明小鼠肝细胞特异性HuR基因敲除成功。HE染色结果提示HuRLKO小鼠的肝细胞出现变性水肿、局部坏死。高脂喂养实验提示两组小鼠在肝重、肝体比、AST、ALT、HDL-C、血糖上的差异具有统计学意义(P<0.05),但在体重、TG、LDL-C的差异没有统计学意义(P>0.05)。结论 HuR基因是维持小鼠肝细胞功能的必要基因,Cre-LoxP技术可成功构建HuRLKO小鼠模型,且特异性高,表型明显,为研究HuR在肝脏各项疾病的发生发展中所扮演的角色,提供了一个很好的疾病模型。