自然杀伤细胞与丙型肝炎病毒感染的Huh7.5细胞体外共培养后的功能变化

目的探讨体外丙型肝炎病毒(HCV)感染对NK细胞功能产生的影响及其可能的机制。方法利用质粒JC1-Flag2体外转录得到的HCV感染性颗粒(HCVcc)以MOI4.8感染Huh7.5细胞(Huh7.5-HCVcc),与健康人外周血分离得到的NK细胞进行共培养。与Huh7.5-HCVcc细胞共培养前后,采用ELISA法和MTT比色法分别检测NK分泌细胞因子IFN-γ、TNF-α和IL-10的水平和细胞杀伤活性,以评估HCV感染对NK细胞功能的影响。结果与MOI4.8的Huh7.5-HCVcc细胞共培养,NK细胞分泌IFN-γ、TNF-α和IL-10水平受到抑制,其中IFN-γ在共培养6 h(P<0.001)、9 h(P<0.001)、12 h(P<0.001)受到显著抑制,TNF-α在共培养6 h(P<0.001)、9 h(P<0.001)、12 h(P=0.001)受到显著抑制,IL-10在共培养6 h(P<0.001)、9 h(P=0.006)受到显著抑制;且NK细胞分泌细胞因子IFN-γ、TNF-α和IL-10的功能均在共培养6 h受到的抑制效应最大,平均抑制率分别为24.1%、20.7%和24.3%。NK细胞杀伤活性在共培养6 h(P=0.023)受到抑制,平均抑制率为16.6%。结论在体外与MOI4.8的Huh7.5-HCVcc细胞共培养,NK细胞分泌细胞因子(IFN-γ、TNF-α和IL-10)和细胞杀伤功能均受到抑制,且在不同时间点受到的抑制程度不同,提示NK细胞在HCV感染的不同阶段可能起到不同的作用。

带荧光标记的新型丙型肝炎病毒感染性克隆的构建及其活性鉴定

丙型肝炎病毒（HCV）属于黄病毒科丙型肝炎病毒属。研究[1]发现在HCV NS5A结构域Ⅲ中可插入大量异源序列如绿色荧光蛋白（EGFP）,从而对HCV感染的活细胞进行可视化研究。本次实验将探索利用新型全长HCV感染性克隆（包括HCV基因2a型,同时构建HCV基因5a型嵌合体）,建立带有报告基因EGFP、mCherry的HCV基因2a及5a型的活病毒,在完整HCV生命周期的水平上研究感染情况,为寻找HCV新药物提供治疗靶点。

一种改进型基于荧光蛋白重定位系统的丙型肝炎病毒滴度检测方法的建立

目的建立一种简单、快速检测丙型肝炎病毒(hepatitis C virus,HCV)感染的荧光细胞系检测系统,并用其检测HCV滴度。方法通过RT-PCR法获得干扰素β启动刺激因子-1(interferon beta promoter stimulator-1,IPS-1)蛋白C-端第462-540位氨基酸(C462-540)的基因序列及含有SV40核定位信号的IPS-1(C462-540)基因序列,插入经同样酶切的慢病毒表达载体LV-CAG--EGFP-WPRE、LV-CAG—mCherry(RFP)-WPRE,构建表达EGFP-IPS-1(C462-540)、RFP-NLS-IPS-1(C462-540)的慢病毒重组表达质粒;在此基础上构建含有IPS-1(C462-540)-2A-EGFP-puro、IPS-1(C462-540)-IRES-EGFP-puro的慢病毒重组表达质粒;利用293T细胞包装含有IPS-1(C462-540)蛋白的重组慢病毒;感染Huh7.5细胞,流式细胞仪筛选稳定表达增强型绿色荧光蛋白(enhanced green fluorescent protein,EGFP)、红色荧光蛋白(red fluorescent protein,RFP)的Huh7.5细胞,或用puromycin筛选稳定表达EGFP的Huh7.5细胞;利用10倍系列稀释的HCV感染上述细胞,检测HCV的滴度。结果测序表明4种慢病毒表达质粒构建正确;收获的慢病毒感染Huh7.5细胞48 h后,可见EGFP或RFP表达,经流式细胞仪分选获得了稳定表达EGFP-IPS-1(C462-540)、RFP-IPS-1(C462-540)的细胞系,经puromycin筛选获得了稳定表达EGFP-IPS-1(C462-540)的细胞系;经10倍系列稀释的HCV感染后,弥散在细胞质中的点状EGFP、RFP会扩散到整个细胞或定位到细胞核中,在甲基纤维素的限制下形成明显的荧光噬斑点,通过计算荧光噬斑点数得到用Huh7.5-EGFP-IPS-1(462-540)-IRES-PURO、Huh7.5两种细胞检测的HCV滴度分别为(5.6±0.2)×10~5和(5.5±0.2)×10~5 PFU/mL,二者无显著差异。结论成功构建了含有绿色荧光或红色荧光报告系统的细胞系,建立了一种简单、快速检测HCV滴度的新方法。