高致病性猪繁殖与呼吸综合征活疫苗(JXA1-R株)免疫后病毒血症和抗体消长规律

应用高致病性猪繁殖与呼吸综合征活疫苗(JXA1-R株)对28-30日龄的仔猪进行免疫,前8周每周采血,8周后每2周采血进行疫苗毒核酸检测和抗体水平检测,直至免疫后第16周。结果表明,高致病性猪繁殖与呼吸综合征活疫苗(JXA1-R株)在血清中存在的最长时间大约为6周;抗体从免疫后第2周开始转阳,至第3周时全部为阳性,并且抗体水平不断上升,至免疫后第10周时平均抗体水平达到最高。

高致病性猪繁殖与呼吸综合征活疫苗(JXA1-R株)免疫后在血清中存在时间的报告

本研究应用高致病性猪繁殖与呼吸综合征活疫苗(JXA1-R株)对28~30日龄的仔猪进行免疫,前8周每周采血,8周后每2周采血进行疫苗毒核酸检测,直至免疫后第16周。结果表明,高致病性猪繁殖与呼吸综合征活疫苗(JXA1-R株)在血清中存在的最长时间约为6周,但有的猪呈现间歇性携带疫苗毒。

猪繁殖与呼吸综合征病毒类NADC30毒株与JXA1-R疫苗株荧光定量PCR鉴别检测方法的建立及应用

为鉴别检测猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)类NADC30毒株HNhx和JXA1-R疫苗株,根据类NADC30毒株HNhx和JXA1-R疫苗株非结构蛋白2(Nsp 2)基因序列差异,设计特异性引物和探针,建立TaqMan荧光定量PCR和SYBR GreenⅠ荧光定量PCR检测方法。结果显示,2种方法中,标准品在10^(3)~10^(8)拷贝/μL均具有良好线性关系,标准曲线R^(2)值均在0.990以上;基于TaqMan探针法的荧光定量PCR方法,JXA1-R株、HNhx株的最低检出量分别为10^(4)、10^(3)拷贝/μL,SYBR GreenⅠ荧光定量PCR方法的最低检出量均为100拷贝/μL;重复性分析结果显示,批内和批间试验的变异系数均小于1.5%,呈现出良好重复性。综上,成功建立了鉴别检测类NADC30毒株HNhx和JXA1-R疫苗株的方法,且稳定性好、特异性强,可以为PRRSV的鉴别检测提供技术支持。

集约化猪场不同毒株猪繁殖与呼吸综合征弱毒活疫苗免疫后血液中持续带毒及抗体消长规律研究

某地区猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)与中国高致病性猪繁殖与呼吸综合征病毒(hp-PRRSV)同源性极高,为了筛选适合该地区病情的疫苗,指导养殖户生产,试验选择hp-PRRS弱毒活疫苗(JXA1-R株)和PRRS弱毒活疫苗(VR-2332株)作为疫苗候选株,选取30日龄、健康状况良好、群体差异性小的断奶仔猪30头,随机分成A、B和C组,每组10头,A组注射hp-PRRS弱毒活疫苗(JXA1-R株),B组注射PRRS弱毒活疫苗(VR-2332株),C组注射相同剂量生理盐水作对照,免疫前和免疫后14、28、42、56、70、84d采集血清,通过淋巴细胞计数、血清病毒核酸检测、血清抗体检测等分析猪体内hp-PRRS弱毒活疫苗(JXA1-R株)和PRRS弱毒活疫苗(VR-2332株)免疫应答情况。试验结果显示,淋巴细胞数量方面,仔猪免疫后,淋巴细胞数量均上升,42d时A、B组均达到最大值,A组为19.3×109/L,B组为16.7×109/L,C组则一直处于原始水平;抗体阳性方面,14d时A组为80%,B组为60%,C组为0,42d时A组为100%,B组为80%,C组为0;病毒核酸阳性率方面,14d时A组为90%,B组为100%,C组为0,42d时,A组为40%,B组为70%,C组为0,70d时,A组为0,B组为20%,C组为0。由此可知,hp-PRRS弱毒活疫苗(JXA1-R株)能快速诱导猪发生免疫应答、产生免疫抗体,抗体持续时间长、效价高、稳定性良好,且疫苗毒在体内存在时间短、减毒时间快、安全性高,对所研究地区猪群免疫具有优越效果。

高致病性猪蓝耳病活疫苗免疫效果比较研究

为了对高致病性猪繁殖与呼吸综合征活疫苗(HP-PRRS)免疫效果进行比较,选择辽宁地区某养殖场临床健康仔猪60头,随机分为Ⅰ组和Ⅱ组,两组仔猪均于30日龄首次免疫某厂家的Hu N4-F112株活疫苗,Ⅰ组于60日龄进行加强免疫,两组均于180日龄进行最终免疫,每次免疫后30 d采集血样,进行PRRSV抗体水平检测,两组在首免后30日检测抗体,未见明显差异(P>0.05);两组均于210日龄再次检测,两组抗体水平差异显著(P<0.05)。同时选择临床健康仔猪90头,随机分为3组(A组、B组和C组),三组仔猪均于30日龄分别免疫Hu N4-F112株、TJM株及JXA1-R株高致病性猪蓝耳病活疫苗,严格隔离饲养,免疫后30 d后采集血样,进行PPRSV抗体检测,结果表明三种毒株活疫苗对仔猪的免疫效果无明显差异(P>0.05)。

高致病性猪繁殖与呼吸综合征活疫苗的免疫效果观察

使用高致病性猪繁殖与呼吸综合征(JXA1-R株)活疫苗对仔猪进行免疫,仔猪无不良临床表现;使用该疫苗对配种前母猪、怀孕80～90d母猪、临产前15d母猪进行免疫,母猪精神、食欲、体温均正常,并在预产期顺利产仔。JXA1-R株活疫苗表现出良好的安全性。使用JXA1-R株活疫苗对猪只进行免疫,7d即产生抗体;对仔猪进行免疫,21d～28d即能抵抗强毒攻击。恩平市种猪场和新兴商品肉猪场使用了JXA1-R株活疫苗,获得了满意的免疫效果,证明高致病性猪繁殖与呼吸综合征(JXA1-R株)活疫苗能预防猪繁殖与呼吸综合征的发生。

高致病性猪蓝耳病活疫苗不同剂量的效果比较试验

通过开展高致病性猪蓝耳病活疫苗(JXA1-R株)1头份与2头份免疫剂量的试验,表明1头份与2头份免疫效果相似,均能达到理想的免疫效果,但考虑到免疫初期2头份免疫对仔猪体内抗体的影响及增加了疫苗费用两方面因素,建议选用1头份免疫。

1株田间自然重组PRRSV类NADC30毒株的分离鉴定及序列分析

为了解田间猪繁殖与呼吸综合征病毒（PRRsv）的流行及变异情况，本研究将PRRSV阳性样品接种到Marc－145细胞并传代后成功分离到1株PRRSV，将其命名为HENZMD-9，并对其全基因序列进行测定和分析。结果显示，HENZMD-9为1株类美国NADC30毒株，并与国内高致病性PRRSV（HP—PRRRSV）毒株的2个片段发生重组，这2个片段分别来自HP—PRRSV JXA1株的细胞传代致弱株JXA1-P80及JXA1P45，分别位于基因组5’端及开放式阅读框lab区域，表明HENZMD-9很有可能与JXA1-R疫苗回复株发生了重组，提示不同类型毒株在田间的共存会加剧PRRSV的演变，从而增加临床防控难度。因此，持续监测PRRSV田间流行及变异动态对PRRSV的防控具有一定的，临床指导意义。

猪高致病性蓝耳病弱毒活疫苗免疫试验

为了更好地指导养殖户应用高致病性蓝耳病活疫苗(JXA1-R株),本中心从淋巴细胞计数、病毒核酸检测、免疫抗体检测等方面,分析了高致病性蓝耳病弱毒活疫苗免疫应答情况。本次试验选取30天龄的杜长大三元断奶仔猪20头,随机分成A、B两组,每组10头。A组注射J XA1-R株活疫苗,B组头注射生理盐水作对照。结果显示该疫苗免疫仔猪28天后,淋巴细胞由7.585×109/L上升到15.28×109/L,免疫抗体阳性率由0%上升到100%,免疫猪病毒核酸检出率由0%上升到90%。揭示了PRRS活疫苗(JXA1-R株)能使仔猪产生较好的免疫应答,疫苗毒感染持续时间多数超过28天。

2株与疫苗病毒高度同源的猪繁殖与呼吸综合征病毒的鉴定和致病性分析

为了解河南地区猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)流行毒株的特征及致病性,对从河南省两个免疫过高致病性PRRSV(HP-PRRSV)减毒活疫苗后不久发病猪场分离的两株PRRSV HENZK-1和HENPDS-2进行了全基因组测序、分析和致病性研究。结果表明,两株PRRSV分离株与HP-PRRSV的细胞传代致弱疫苗株JXA1-P80/JXA1-R高度同源。致病性试验表明,感染HENZK-1和HENPDS-2的仔猪出现明显临床症状,包括高热、食欲减退、呼吸困难等,且肺部出现了肉眼和组织学病变;而同源商品疫苗对照组JXA1-R虽未出现明显临床症状,但日增重降低,肺部有肉眼和组织学病变,并检测、回收到病毒。综上所述,有理由认为HENZK-1和HENPDS-2是由HP-PRRSV疫苗株JXA1-R演化而来,其来源猪群临床发病与其毒力返强、疫苗毒株在解剖和组织学上的损伤和排毒能力有一定关系,但具体原因仍需进一步研究。本研究为谨慎使用高致病性PRRSV减毒活疫苗及PRRS控制策略提供了重要依据。