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小黄鱼figlα基因的克隆及其在性腺中的表达分析
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作者 李冰冰 谢庆平 +4 位作者 楼宝 魏福亮 蔚敏 詹炜 刘峰 《浙江海洋大学学报(自然科学版)》 CAS 2021年第5期375-383,共9页
figlα基因是卵母细胞特异性基因,隶属于碱性螺旋-环-螺旋(basic helix-loop-helix,bHLH)家族。为探究figlα基因在小黄鱼雄性特异的雌雄同体阶段和性别分化中的作用,本研究克隆了小黄鱼figlα基因的全长序列,并通过氨基酸序列比对分析... figlα基因是卵母细胞特异性基因,隶属于碱性螺旋-环-螺旋(basic helix-loop-helix,bHLH)家族。为探究figlα基因在小黄鱼雄性特异的雌雄同体阶段和性别分化中的作用,本研究克隆了小黄鱼figlα基因的全长序列,并通过氨基酸序列比对分析和构建系统进化树对其进行生物信息学分析。进一步检测figlα基因的组织分布,并用原位杂交的方法分析figlα的细胞表达类型。结果表明:小黄鱼figlα基因的CDS序列长度为594 bp,共编码197个氨基酸,预测分子质量约为22.6 kD,理论等电点为5.03,无信号肽,不含有跨膜区;氨基酸序列与大黄鱼的氨基酸序列的同源性最高,高达99.5%;进化分析表明小黄鱼figlα基因与大黄鱼聚在同一个分支,亲缘关系最近;RT-PCR结果显示figlα基因只在卵巢组织中表达,在其他组织中不表达;原位杂交结果显示figlα表达于60、90和150 dph(days post-hatching,dph)卵巢的初级卵母细胞中,也表达于60 dph雌雄同体兼性阶段的精巢初级卵母细胞中,但在90和150 dph的精巢中未检测到信号。综上所述,figlα基因在小黄鱼的卵巢发育及精巢特殊的雌雄同体兼性阶段起到重要的调控作用。 展开更多
关键词 小黄鱼 figlα基因 基因克隆 系统进化分析 原位杂交
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中华鳖figlα基因的克隆及其在性腺中的表达分析 被引量:1
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作者 赵岩岩 李伟 +2 位作者 吴栩灵 朱新平 徐红艳 《基因组学与应用生物学》 CAS CSCD 北大核心 2019年第10期4430-4438,共9页
为解析中华鳖figlα基因功能及其对配子生成的作用机制,本研究开展了中华鳖figlα基因的cDNA序列克隆及其mRNA表达模式分析。克隆获得的figlα基因cDNA序列为714 bp,包含长72个碱基的3'UTR和长642个碱基的开放阅读框(open reading f... 为解析中华鳖figlα基因功能及其对配子生成的作用机制,本研究开展了中华鳖figlα基因的cDNA序列克隆及其mRNA表达模式分析。克隆获得的figlα基因cDNA序列为714 bp,包含长72个碱基的3'UTR和长642个碱基的开放阅读框(open reading frame,ORF),共编码213个氨基酸。中华鳖Figlα蛋白序列与西部锦龟Figlα蛋白的同源性高达93%,且包含一个Figlα蛋白高度保守的bHLH(basic helix-loop-helix)结构域,因此被命名为PSFiglα。同时,NJ系统进化树分析显示中华鳖Figlα蛋白与哺乳类、鸟类的聚为一支。荧光定量PCR分析发现中华鳖figlα基因主要在性腺中表达:在卵巢中表达最强,精巢中表达较弱,而在其它体组织中均未检测到明显的表达。冰冻切片原位杂交分析表明:中华鳖figlαmRNA在其卵子发生过程的各期卵泡中均有表达,在初级卵母细胞(Ⅱ~Ⅴ期)中表达最强且主要分布在卵母细胞的胞质中;在生长卵母细胞(Ⅵ~Ⅸ期)及成熟卵母细胞(Ⅹ期)中,figlαmRNA主要分布在卵母细胞胞质及其周边的滤泡细胞中。在精巢中,中华鳖figlαmRNA在初级精母细胞中表达最强,在次级精母细胞和精子细胞中表达较强,在精原细胞中表达较弱,而在体细胞中几乎检测不到信号。研究结果表明figlα基因可能主要调控中华鳖卵泡的形成及其卵巢的发育,同时可能在中华鳖精子发生过程中也有一定的调控作用。本研究为进一步开展中华鳖及其它爬行动物配子生成以及性腺发育分化的研究奠定了基础。 展开更多
关键词 中华鳖 figlα 基因 MRNA 表达分析 卵子发生 精子发生
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FIGL1 coordinates with dosage-sensitive BRCA2 in modulating meiotic recombination in maize
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作者 Ting Zhang Shuang‐Hui Zhao +1 位作者 Yan Wang Yan He 《Journal of Integrative Plant Biology》 SCIE CAS CSCD 2023年第9期2107-2121,共15页
Meiotic crossover(CO)formation between homologous chromosomes ensures their subsequent proper segregation and generates genetic diversity among offspring.In maize,however,the mechanisms that modulate CO formation rema... Meiotic crossover(CO)formation between homologous chromosomes ensures their subsequent proper segregation and generates genetic diversity among offspring.In maize,however,the mechanisms that modulate CO formation remain poorly characterized.Here,we found that both maize BREAST CANCER SUSCEPTIBILITY PROTEIN 2(BRCA2)and AAA-ATPase FIDGETIN-LIKE-1(FIGL1)act as positive factors of CO formation by controlling the assembly or/and stability of two conserved DNA recombinases RAD51 and DMC1 filaments.Our results revealed that Zm BRCA2 is not only involved in the repair of DNA double-stranded breaks(DSBs),but also regulates CO formation in a dosage-dependent manner.In addition,Zm FIGL1interacts with RAD51 and DMC1,and Zmfigl1 mutants had a significantly reduced number of RAD51/DMC1 foci and COs.Further,simultaneous loss of Zm FIGL1 and Zm BRCA2 abolished RAD51/DMC1foci and exacerbated meiotic defects compared with the single mutant Zmbrca2 or Zmfigl1.Together,our data demonstrate that Zm BRCA2 and Zm FIGL1 act coordinately to regulate the dynamics of RAD51/DMC1-dependent DSB repair to promote CO formation in maize.This conclusion is surprisingly different from the antagonistic roles of BRCA2and FIGL1 in Arabidopsis,implying that,although key factors that control CO formation are evolutionarily conserved,specific characteristics have been adopted in diverse plant species. 展开更多
关键词 BRCA2 CROSSOVER figl1 MEIOSIS MAIZE
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